Aspergillus Oryzaella ja Aspergillus Cristatuksella fermentoidun riisikojin aineenvaihduntaprofilointi ja ikääntymistä estävä toiminta: vertaileva tutkimus Ⅱ

3. Keskustelu

Riisin eri osilla, kuten kuorella, leseillä, alkioilla ja endospermilla, pinnasta sisäosaan, on erilainen kemiallinen koostumus (26). Erityisesti riisileseet sisältävät erilaisiafenolihapotjaflavonoidit, joiden tiedetään olevan esilläantioksidanttiaktiivisuus.Lisäksi riisin soluseinä koostuu arabinoksylaanirakenteesta, joka sisältää ksyloosia, arabinoosia, ferulihappoa ja ferulihappoa (27). Riisin soluseinä on yleensä vaikea tunkeutua, ja riisikojin etuna on helppo tunkeutua riisin soluseinää eri entsyymeillä, kuten proteaasi ja glukosidaasi siirrostemikrobista (24. Siksi riisi koii osoittaakorkeampi tyrosinaasia estävä aktiivisuusjaantioksidanttitoimintaakuin sen raaka-aineet, koska se sisältää arvokkaita rikastettuja yhdisteitä (28.

Napsauta tätä saadaksesi lisätietoja Cistanchen antioksidanttitoiminnasta

Noudatimme metabolomiikan lähestymistapaa kahdella eri rihmasienellä fermentoidulle riisikojille, mikä selvitti merkittäviä eroja entsyymiaktiivisuudessa, metaboliittien tuotannossa ja bioaktiivisuuksissa. Erilaisten entsyymien, kuten ympättyjen A. cristatusin ja A. oryzaen tuottamien a-amylaasin, &glukosidaasin ja -glukosidaasin, aktiivisuus lisääntyi fermentaatioajan myötä (kuvio 3). Koska nämä entsyymit hajottavat arabinoksylaanirakenteen, erilaiset fenolihapot erotettiin riisin soluseinästä molemmissa näytteissä, kuten kuvassa 2. Nämä fenolihapot ovat potentiaalisia antioksidantteja, jotka lievittävät oksidatiivista stressiä 291. Näin ollen antioksidanttiaktiivisuus ja TPC-määritys lisääntyivät fermentaatioajan pidentäminen fenolihappopitoisuuden lisääntyessä (kuvat 2 ja 4) Erityisesti RAC:ssa on korkeampi flavonoidien pitoisuus kuin RAO:ssa, koska siinä on korkeampi -glukosidaasia, joka hydrolysoi -glykosidisidoksen riisin soluseinästä. A. cristatusin kasvu riisikojissa. Sen lisäksi, että se irtoaa riisin soluseinästä, glukosidaasi hydrolysoi flavonoidglukosidimuodon aglykonimuodoksi, jolla on korkeampi antioksidanttiaktiivisuus 30]. Lisääntynyt flavonoidglukosidimuoto ja aglykonimuoto lisäävät antioksidanttiaktiivisuutta, kuten ABTS, DPPH FRAP ja TFC, jotka voivat vaikuttaa RAC:n antioksidanttiaktiivisuuteen, kuten korrelaatioverkostokartassa (kuva 4) näkyy. Tämä ilmiö havaittiin myös aiemmassa tutkimuksessa, joka osoitti glukosidi-isoflavonien biotransformaatiota aglykoneiksi ja lisääntyvän antioksidanttiaktiivisuuden malleja mentaatioajan mukaan fermentoidussa soijapavussa. cristatus [311.

RAO:lla on korkeampi a-glukosidaasiaktiivisuus, joka katkaisee a-glykosidisia sidoksia ja generoi automaattisesti korkeamman glukoosipitoisuuden. Sen lisäksi, että glukoosi on sienen päähiilenlähde, RAC:ssa glukoositaso laski fermentaation jälkeen, koska sitä käytettiin sekundääristen metaboliittien, kuten auroglausiinijohdannaisten, synteesiin, jotka ovat A. cristatusin, ei A.:n, tuottamia erottuvia pigmenttiyhdisteitä. oryzne. Aiemmat tutkimukset ovat raportoineet, että auroglausiinijohdannaisilla on aktiivisuutta DPPH:ssa, ja niiden oletetaan olevan mahdollisia antioksidanttiyhdisteitä [32]. Lisäksi romahtanut riisin soluseinä saattaa mahdollistaa entsyymien tunkeutumisen riisin sisimpiin osiin [24]. Siten yhä enemmän metaboliitteja voitiin uuttaa vapaasti keskeytyksettä riisin ulkoseinästä.

Sekä RAO:n että RAC:n bioaktiivisuuksien ja metaboliittien välisessä korrelaatioverkostokartassa (kuva 4) yleisenä suuntauksena oli, että flavonoideja, orgaanisia happoja, sokerijohdannaisia ​​ja rasvahappoja ehdotettiin mahdollisiksi bioaktiivisuuksien edistäjiksi. Flavonoidit ja fenolihapot ovat tunnettuja antioksidantteja ja niillä on monia etuja eri toimintojen suhteen. Koska ne voivat lievittää oksidatiivista stressiä, niitä käytetään parantamaan ruoan laatua ja parantamaan ihon ikääntymistä [33]. Lisäksi aiemmassa tutkimuksessa on raportoitu, että rasvahapot ja antioksidantit voivat luoda synergistisen vaikutuksen ihon ikääntymisen ehkäisyssä ja hallinnassa [34].

Toisaalta auroglausiini ja lysofosfolipidijohdannaiset toimivat lisävaikuttajina metaboliitteihin RAC:ssa [35]. Auroglausiinijohdannaisilla on antioksidanttivaikutuksia, kuten edellä on todettu, ja siksi oletamme, että niillä on mahdollisuus lopettaa vapaiden radikaalien ketjureaktioita ihon stressin lievittämiseksi. Yahagi et ai. osoittivat, että lysofosfolipidit voivat ylläpitää ihon kosteutta tehostamalla ihon suoja- ja kosteutustoimintoihin liittyvien tekijöiden ilmentymistä ihossa [36]. Kosteuttaminen on elintärkeä tekijä terveelle iholle, koska kuivuus aiheuttaa ihon heikkenemistä, joille on ominaista karheus, hilseilevä iho ja hienot rypyt [37,38]. Arvioimme, että auroglausiinilla ja lysofosfolipideillä on parempi ihon ikääntymistä estävä vaikutus RAC:n viimeisessä käymisvaiheessa kuin RAO:ssa. Zhao et ai. osoitti, että Fuzhuan-tiilitee, joka sisältää hallitsevan A. cristatus -sienen, voi estää valovanhenemista sammuttamalla ROS:n ja laukaisemalla Nrf2-signalointikaskadeja [21]. Siksi oletamme, että RAC tarjoaa paremman ikääntymisen estopotentiaalin kuin RAO, koska se toimii epäsuoria reittejä pitkin, kuten luomalla paremmat ihoolosuhteet runsaalle kosteudelle javapauttaa vapaiden radikaalien stressiä.

Kaiken kaikkiaan uskomme, että tehostetut rasvahapot, fenolihapot, flavonoidit, lysofosfolipidit ja hydrokinonit voivat lisätä antioksidanttiaktiivisuutta ja parantaa elastiinin ja kollageenin RNA-ilmentymistä sekä tukahduttaa MMP:n-1 RNA-ilmentymistä. käyminen. Näillä yhdisteillä oli erilaisia ​​​​muutosmalleja metaboliiteissa siirrostesienen mukaan ja ne vaikuttivat erilaisiin bioaktiivisuuksiin. Tämä tutkimus selvitti eroa yleisessä aineenvaihdunnassa saman Aspergillus-suvun eri lajien välillä käyttämällä metabolomiikan lähestymistapaa. Lisäksi erilaiset entsyymiaktiivisuudet vaikuttivat eri metaboliittien tuotantoon ja indusoivat erilaisia ​​bioaktiivisuuksia RAO:ssa ja RAC:ssa

4. Materiaalit ja menetelmät

4.1. Kemikaalit ja reagenssit

4.2. Näytteen valmistelu ja uuttaminen

Koji-muotteja A. oryzae KCCM 11372 (Korean Culture Center of Micro-organism, KCCM; Korean tasavalta) ja A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF Cosmax BTI R&I -keskuksesta; Seongnam, Korea) käytettiin riisin käymiseen ja siirrostettiin erikseen. . Kutakin mikro-organismia pidettiin mallasuuteagarilla (mallasuute, 20 g; glukoosi, 20 g; peptoni, 1 g; agar, 20 g/l) 28 ◦C:ssa. Koji-tuotannon fermentaatiovaiheiden bioprosessi on mukautettu julkaisusta Lee et al. [11]. A. oryzaella ja A. cristatusilla fermentoidut riisikoji-näytteet kerättiin joka toinen päivä (päivästä 0 päivään 8) ja säilytettiin pakasteolosuhteissa (-80 ◦C) lisäanalyyseihin saakka. Kaikki näytteet valmistettiin kahdella biologisella rinnakkaisnäytteellä.

Riisikoji-näytteen uuttomenetelmä mukautettiin julkaisusta Lee et ai. pienin muutoksin [11]. Lyhyesti sanottuna jauhetut pakastekuivatut riisikoji-näytteet (5 g) uutettiin lisäämällä 8 0-prosenttista vesipitoista etanolia (40 ml) ja ravistelemalla orbitaaliravistelijalla (200 rpm 24 tuntia) huoneenlämpötilassa. Sen jälkeen, kun näytteitä oli sentrifugoitu 10, 000 rpm 5 minuutin ajan 4 ◦C:ssa, supernatantit suodatettiin 0,22 µm Millex GP -suodattimella (Merck Millipore, Billerica, MA, USA). Suodatetut näyteuutteet kuivattiin käyttämällä nopeaa tyhjiökonsentraattoria (Hanil, Soul, Korea) ja kuivapaino mitattiin uuttosaannon arvioimiseksi.

4.3. GC-TOF-MS-analyysi

Uutettujen riisikojinäytteiden derivatisointivaiheet olivat Lee et ai. [11]. GC–TOF–MS-analyysi suoritettiin Agilent 7890A GC-järjestelmällä (Santa Clara, CA, USA) Pegasus HT TOF-MS:llä (Leco Corporation, St. Joseph, MI, USA). Kantokaasua (heliumia) käytettiin RTx-5MS:n kanssa (pituus 30 m × sisähalkaisija 0,25 mm, J&W Scientific, Folsom, CA, USA) vakiovirtausnopeudella 1,5 ml/min. Injektorin ja ionilähteen lämpötilat pidettiin 250 ja 230 ◦C:ssa, vastaavasti. Uunin lämpötila pidettiin 75 ◦C:ssa 2 minuuttia ja nostettiin sitten 300 ◦C:seen nopeudella 15 ◦C/min, jota pidettiin yllä 3 minuuttia. Sitten injektoitiin 1 µl näytettä massaskannausalueella m/z 50–800. Kaikki näyteanalyysit suoritettiin kolmella analyyttisellä rinnakkaisnäytteellä.

4.4 UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS-analyysi

Uutetut riisikoji-näytteet analysoitiin sekundaaristen metaboliittien varalta käyttämällä ultrahigh-performance-nestekromatografiaa lineaarista trap-kvadrupoliorbitrap-tandemmassaspektrometriaa (UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS) käyttämällä Kwonin et al. kuvaamia protokollia. [39]. Jokainen näyte erotettiin käyttämällä Phenomenex KINETEX® C18 -kolonnia (100 mm 2,1 mm, 1,7 m hiukkaskoko; Torrance, CA, USA). Massaspektrit ja fotodiodiryhmät sekä positiivisessa että negatiivisessa ionimoodissa viritettiin m/z:lle 100-1000 ja 200-600 nm.

4.5. Tietojenkäsittely ja tilastollinen analyysi

Raaka GC-TOF-MS- ja UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS-tiedot muunnettiin netCDF (*.cdf) -muotoon käyttämällä Leco ChromaTOF- ja Thermo Xcalibur -ohjelmistoa, vastaavasti. Vastaavat net CDF (*.cdf) -tiedostot altistettiin MetAlignin (käytetty 13. heinäkuuta 2021)) ohjelmistovälitteiselle tietojenkäsittelylle käyttäen protokollia, jotka ovat kuvanneet Lee et al. [11,24]. Massaspektrometriset tiedot, jotka edustavat sopivaa huippumassaa (m/z), retentioaikoja (min) ja huipun pinta-alatietoja muuttujina, arvioitiin SIMCA-P plus 12.{13}} -ohjelmistolla (Umetrics, Umea, Ruotsi) monimuuttujatilastoanalyysiin. Ennen pääkomponenttianalyysiä (PCA), osittaisten pienimmän neliösumman erotteluanalyysiä (PLS-DA) ja ortogonaalista osittaisen pienimmän neliösumman erotteluanalyysiä (OPLS-DA) tietojoukot muunnettiin logaritmillisesti ja yksikkövarianssi skaalattiin riisikojin vertailua varten. fermentoitu eri sienillä. PASW Statistics 18:a (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) käytettiin merkittävien erojen testaamiseen (p-arvo < 0,05) yksisuuntaisella varianssianalyysillä ja korrelaatiokertoimien arvojen laskemiseen. korrelaatiokartalle. Korrelaatioverkostokartta metaboliittien, joiden Pearsonin korrelaatiokerroinarvo on suurempi kuin 0,5, ja bioaktiivisuuksien välillä muodostettiin Cytoscape-ohjelmistolla (https://www.cytoscape.org/ (saatu 13. heinäkuuta 2021)). Alustavien metaboliittien tunnistaminen suoritettiin sovittamalla yhteen molekyylipainot ja molekyylikoostumus, retentioaika, massafragmentti

kuvioita ja ultravioletti (UV) -tietojen absorbanssia kirjallisuudesta ja sisäisestä kirjastostamme

4.6. Entsymaattisten aktiivisuuksien määritys

-amylaasin, -glukosidaasin ja -glukosidaasin entsymaattisen aktiivisuuden määritykset suoritettiin aikaisempien tutkimusten mukaisesti [25,40,41]. 10 g kutakin riisikoji-näytettä uutettiin 90 ml:aan vettä ravistamalla orbitaaliravistelijalla 120 pm ja 25 ◦C 1 tunnin ajan. Näytteiden suodattamisen jälkeen supernatantteja käytettiin entsyymiaktiivisuuksien arvioimiseen.

4.7. Antioksidanttiaktiivisuuden ja fenoli- ja flavonoidipitoisuuden määrittäminen

Riisikoji-näytteiden antioksidanttiaktiivisuuden määrittämiseksi suoritettiin ABTS-, DPPH-, ferric-pelkistävä antioksidanttiteho (FRAP), fenolipitoisuus (TPC) ja kokonaisflavonoidipitoisuus (TFC) -määritykset kolmena rinnakkaisena.

ABTS- ja FRAP-määritykset suoritettiin käyttämällä menetelmää, jonka ovat kuvanneet Lee et ai. [24]. Lyhyesti sanottuna ABTS-kantaliuos laimennettuna tislatulla vedellä lopullisen absorbanssin 0,7 ± 0.02 saavuttamiseksi 750 nm:ssä (180 µL) oli lisätään kuhunkin näyteuutteeseen (20 µL) 96-kuoppalevyllä. Reaktion annettiin tapahtua 6 minuuttia pimeässä huoneenlämpötilassa. Absorbanssi mitattiin aallonpituudella 750 nm käyttämällä spektrofotometriä. FRAP-määritystä varten seos, jossa oli 300 mM asetaattipuskuria (pH 3,6), 20 mM rauta(III)kloridia ja 10 mM 2,4,6-tripyridyyli-S-triatsiini (TPTZ) -liuosta 40 mM HCl:ssa (10:1:1, v/v/v) valmistettiin. Näyte (10 ui) sekoitettiin 300 ui:n kanssa FRAP-reagenssia ja inkuboitiin huoneenlämpötilassa 6 minuuttia. Absorbanssi mitattiin aallonpituudella 570 nm. DPPH-määritys suoritettiin noudattamalla menetelmää, joka on mukautettu julkaisusta Won et ai. [42], jossa 180 µl DPPH-varastoliuosta (0,2 mM etanolissa) sekoitettiin 20 µl:aan riisikojia kahdella eri sieniuutteella 96-kuoppalevyillä ja annettiin reagoida 20 minuuttia huoneenlämmössä. pimeässä. DPPH:n vapaiden radikaalien absorbanssi mitattiin aallonpituudella 515 nm. ABTS:n, FRAP:n ja DPPH:n tulokset esitetään Trolox-ekvivalenttisen antioksidanttikapasiteetin (TEAC) pitoisuutena (mM) milligrammaa kojia kohti. Standardikonsentraatiokäyrät vaihtelivat välillä 0,0078 mM - 1 mM TEAC.

TFC- ja TPC-määrityksiä varten Lee et ai. [25] seurattiin. TFC-määritystä varten 20 µl kutakin riisikojinäytettä sekoitettiin 20 µl:aan 1 N NaOH:ta ja 180 µl:aan 90-prosenttista dietyleeniglykolia. 96-kuoppalevy. Kun seosta oli inkuboitu 60 minuuttia huoneenlämpötilassa, absorbanssi mitattiin aallonpituudella 405 nm. TFC esitetään naringiiniekvivalenttipitoisuutena (NE) (mM) milligrammaa kojia kohti. Standardipitoisuuskäyrä oli lineaarinen välillä 0,0027 - 0,3445 mM NE. TPC-määrityksen analysointia varten 20 µl kutakin näytettä inkuboitiin 100 µl:n kanssa 0,2 N Folin-Ciocalteu-reagenssia 96-kuoppalevyillä huoneenlämpötilassa 6 minuutin ajan. Sitten seokseen lisättiin 80 ui 7,5-prosenttista natriumkarbonaattiliuosta (Na2CO3) ja annettiin reagoida 60 minuuttia huoneenlämpötilassa. Lopuksi absorbanssi arvioitiin 750 nm:ssä. Tulokset ilmoitetaan gallushappoekvivalenttipitoisuuksina (GE) (mM) milligrammaa kojia kohden standardipitoisuusalueella 0,0230–2,9391 mM GE.

4.8 Soluviljelmät

4.9. Reaaliaikainen polymeraasiketjureaktio

Kokonais-RNA:n eristämiseksi ja kvantifioimiseksi solupelleteistä käytettiin Trizol-reagenssia, ja analyysi suoritettiin käyttämällä spektrofotometriä. cDNA:n synteesi suoritettiin 20 ui:n kokonaisreaktiotilavuudessa; reaktioseos koostui 2 ug:sta kokonais-RNA:ta, oligoa (dT) ja käänteistranskription esiseosta seuraavissa reaktio-olosuhteissa: 45 °C 45 minuuttia, jota seurasi 95 °C 5 minuuttia. RT-PCR:ää käytettiin geeniekspression kvantifiointiin, ja tulokset analysoitiin myöhemmin käyttämällä StepOne PlusTM -järjestelmäohjelmistoa (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA). RT-PCR-monistukset suoritettiin käyttämällä SYBR Green PCR Master Mixiä esisekoitetun ROX:n (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) ja alukkeiden (Bioneer, Daejeon, Korea) kanssa ABI 7300 -instrumentissa valmistajan protokollan mukaisesti. Reaktio-olosuhteet olivat seuraavat: aloitus 95 ◦C:ssa 10 minuutin ajan, minkä jälkeen sykliolosuhteet 95 ◦C 15 s, 60 ◦C 30 s ja 72 ◦C 30 s 40 sykliä. - aktiinia käytettiin sisäisenä kontrollina.

Yhteenvetona voidaan todeta, että riisikoji osoitti erilaisten metaboliittien ja bioaktiivisuuksien tuotantoa eri käytettyjen Aspergillus-lajien mukaan. Korkeammat tasotflavonoiditja auroglausiinijohdannaiset RAC:ssa johtivat korkeampiinantioksidanttiaktiivisuuskuin RAO:ssa. Lisäksi rasvahappojen synergistiset vaikutukset jaantioksidanttisia yhdisteitämolemmista kojista löydetyt yhdisteet liittyivät RNA:n ilmentymiseenihon ikääntymistä estävä tekijä. RAC:sta löydetyt auroglausiinijohdannaiset ja lysofosfolipidit olivat myös ehdokkaita, jotka voivat liittyäIhon ikääntymistä ehkäisevien tekijöiden RNA-ilmentyminen. Siksi, vaikka riisikojia fermentoidaan käyttämällä saman suvun (Aspergillus) jäseniä, eri lajien entsyymiaktiivisuuksissa ja metaboliiteissa on merkittäviä eroja, ja ne vaikuttavatbioaktiivisuudetkutenantioksidanttijaanti-aging toimintaa. Tästä syystä tämä tutkimus tarjoaa kattavan käsityksen sekä logiikan rokotemikrobien järkevälle valinnalle suhteessa

metabolomiikka, parantaa kojin kaupallisen tuotannon laatua.

Täydentävät materiaalit:Seuraavat ovat saatavilla verkossa osoitteessa Kuva S1: PLS-DA-pistekäyrä (A,B) ja OPLS-DA-pistekäyrä (C) riisillekojikanssa fermentoituAspergillus cristatustaiA. oryzaesaatiin UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS:stä (A, C) ja GC–TOF–MS:stä (B). Taulukko S1: Luettelo riisin merkittävästi erottuvista metaboliiteistakojierilaisten kanssaAspergillus spp. UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS:llä tunnistettu käymisen aikana, Taulukko S2: Luettelo riisin merkittävästi erottuvista metaboliiteistakojierilaisten kanssaAspergillus spp. GC-TOF-MS:llä tunnistetun käymisen aikana, kuva S2: Bioaktiivisuuksien (ihosoluvaikutus ja antioksidanttiaktiivisuus) ja riisin korrelaatiokarttakojikanssa fermentoituAspergillus cristatustaiA. oryzaemetaboliitit Pearsonin korrelaatiokertoimen mukaan. Jokainen neliö ilmaisee Pearsonin korrelaatiokertoimen arvot (r).

Tekijän panokset:Käsitteellistäminen, CL ja SL; metodologia, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) ja JR; validointi, HL, SL ja SK (Seoyeon Kyung); muodollinen analyysi, HL ja SK (Seoyeon Kyung); tutkinta, HL ja SL; resurssit, JR, SK (Seunghyun Kang) ja MP; kirjoittaminen – alkuperäisen luonnoksen valmistelu, HL; kirjoittaminen – tarkistus ja editointi, HL ja SL; visualisointi, HL; valvonta, SL ja CL; projektihallinto, SK (Seunghyun Kang), MP ja CL; rahoituksen hankinta, CL Kaikki kirjoittajat ovat lukeneet ja hyväksyneet julkaistunversio käsikirjoituksesta.

Rahoitus:Tätä työtä tuki Korean elintarvike-, maatalouden ja metsätalouden teknologian suunnittelu- ja arviointiinstituutti (IPET) maatalous-, elintarvike- ja maaseudun ministeriön rahoittaman Agricultural Microbiome T&K -ohjelman (The Strategic Initiative for Microbiomes in Agriculture and Food) kautta. Asiat (MAFRA) (apurahanumero 918011-04-3-HD020). Lisäksi tätä työtä tuki Korean elintarvike-, maatalous- ja metsätalouden suunnittelu- ja arviointiinstituutti (IPET) korkean lisäarvon elintarviketeknologian kehittämisohjelman kautta, jota rahoitti maatalous-, elintarvike- ja maaseutuministeriö (MAFRA). (apurahanumero 318027-04-3-HD030)

Tietojen saatavuusilmoitus:Tässä tutkimuksessa esitetyt tiedot ovat saatavilla pyynnöstävastaava kirjoittaja

Kiitokset:Tätä tutkimusta tuki Konkukin yliopiston tutkijarahasto vuonna2020.

Viitteet

1. Sanlier, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC Fermentoitujen elintarvikkeiden terveyshyödyt. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Optimointi riisikojin valmistukseen käyttämällä Aspergillus oryzae CJCM-4 -bakteeria, joka on eristetty korealaisesta perinteisestä mejusta. Food Sci. Biotechnol. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J.; Ai, L. Makuprofiilien parantaminen kiinalaisessa riisiviinissä luomalla käymishiivaa, jolla on erinomainen etanolin sietokyky ja käymisaktiivisuus. Food Res. Int. 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazawa, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. Koji-käynnistimen vaikutus aineenvaihduntatuotteisiin japanilaisessa alkoholijuomasakessa, joka on valmistettu Koshitanrei-sakeriisistä. Biosci. Biotechnol. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. Paikallinen thaimaalainen tahmea musta riisilese: funktionaalisten yhdisteiden lähde immunomodulaatiossa, solujen elinkelpoisuudessa ja kollageenisynteesissä sekä matriisin metalloproteinaasin-2 ja -9 estämisessä. J. Funct. Foods 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J.; Kim, HY; Park, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Aspergillus-kantojen fermentoiman riisin kojin aineenvaihduntaprofilointi ja bioaktiivisuus. J. Microbiol. Biotechnol. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Hapettimet, antioksidantit ja ikääntymisen rappeuttavat sairaudet. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Cronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Vapaat radikaalit ja antioksidantit normaaleissa fysiologisissa toiminnoissa ja ihmisen sairauksissa. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oksidatiivinen stressi ja neurodegeneratiiviset sairaudet: Katsaus alku- ja loppupään antioksidanttihoitovaihtoehdoista. Curr. Neuropharmacol. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Aspergillus candiduksella fermentoidun riisikojin antioksidanttivaikutus ja aktiiviset yhdisteet. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; Shin, HW; Moon, BS; Lee, CH Aikaerotettuja vertailevia metabolomeja Koji-käymiseen ruskean, valkoisen ja jättimäisen alkioriisin kanssa. Food Chem. 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Shaheen, N.; Fatima, A.; Nasab, R. Retinolin ja alfahydroksihapon ikääntymistä estävät vaikutukset keinotekoisesti valokuva-ikääntyneiden ihmisen ihon fibroblastisolulinjojen elastiinikuituihin. Int. J. Med Health Biomed. Pharm. Eng. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, VP; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Joseph, JP; Surapaneni, KM Aristolochia saccatan metanolipitoisen lehtiuutteen in vitro -haavojen paranemisteho johtuu mahdollisesti sen kollageenin -1 ilmentymistä stimuloivasta vaikutuksesta. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Suun kautta otettavan karotenoidirikkaan kihara lehtikaaliuutteen vaikutukset ihon kollageeni I/elastiiniindeksiin. Nutrients 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG UV-indusoidun ROS- ja kollageenivaurion esto Phyllanthus emblica -uutteella normaaleissa ihmisen ihon fibroblasteissa. J. Cosmet. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; Isami, F.; Matsuda, H. Morinda citrifolia -siemenuutteen ja sen aineosien matriisin metalloproteinaasia{1}} estävät vaikutukset UVA-säteilytetyissä ihmisen ihon fibroblasteissa. Biol. Pharm. Sonni. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Song, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Fermentoidun riisileseuutteen ikääntymistä estävä vaikutus UV-indusoituihin normaaleihin ihon fibroblasteihin. euroa Food Res. Technol. 2010, 231, 163–169. [CrossRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Riisin antioksidantit: fenolihapot, flavonoidit, antosyaanit, proantosyanidiinit, tokoferolit, tokotrienolit, -orytsanoli ja fytiinihappo. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Bechman, A.; Phillips, RD; Chen, J. Muutokset riisin ja ohran kojin valituissa fysikaalisissa ominaisuuksissa ja entsyymiaktiivisuudessa käymisen ja varastoinnin aikana. J. Food. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Kang, D.; Su, M.; Duan, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, mahdollinen probioottinen sieni Fuzhuanin tiiliteestä, lievitti liikalihavuutta hiirillä moduloimalla suoliston mikrobiota. Ruokatoiminto. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, SH Suojaus UVB-indusoidulta valovanhenemiselta Fuzhuan-Brick-teevesiuutteella MAPK:iden/Nrf:n kautta2- MMP:n välittämä alasäätely-1. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YC; Choi, I.; Kim, GB Käymisen vaikutus antioksidanttiaktiivisuuteen kasvipohjaisissa elintarvikkeissa. Food Chem. 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Online-seulonta ja vapaita radikaaleja poistavien yhdisteiden tunnistaminen Angelica dahuricassa, joka on fermentoitu Eurotium cristatumilla, käyttämällä HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS-järjestelmää. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH Metabolomics paljastaa optimaalisen viljan esikäsittelyn (jauhatus) kohti riisin koji-käymistä. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Kysy lisää:

Sähköposti:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950