Mekaaninen näkemys diosmiinin aiheuttamasta neurosuojauksesta ja muistin parantamisesta intraserebroventrikulaarisessa kinoliinihapporottamallissa: mitokondrioiden toimintojen ja antioksidanttien elpyminen, osa 2

2.8. Novel Object Recognition Task (NORT).

Standardikäytäntöä noudatettiin Kumarin ja Bansalin [23] mukaisesti. NORT on kannattamaton ja vihamielinen eksteroseptiivinen arkkityyppi, jota käytetään arvioimaan jyrsijöiden impulsiivisen koetustoiminnan kautta hyödynnettyä työtyyppistä muistia. Tutkimus suoritetaan katolla avoimessa vanerissa olevassa kuution muotoisessa astiassa (80 cm × 42 cm × 62 cm), joka on sijoitettu rauhalliselle alueelle ja valaistu 60 W:n LEDillä säiliön tasaisen kirkkauden hallitsemiseksi.

Jyrsijät ovat eräänlaisia ​​pieniä nisäkkäitä, jotka elävät maan päällä. He asuvat usein niityillä, metsissä ja muissa paikoissa. He elävät lempeää elämää ja ovat lyhyitä ja söpöjä. Muihin organismeihin verrattuna jyrsijöillä on vahva muistietu, ja monet tutkimukset ovat osoittaneet, että jyrsijöiden muisti ylittää paljon mielikuvituksemme.

Jyrsijöiden aivot ovat erittäin joustavat, varsinkin kun he käsittelevät tiedon tallentamiseen liittyviä tehtäviä. Monet kokeet ovat osoittaneet, että jyrsijöiden muisti voi jopa ylittää muiden suurten nisäkkäiden muistin. Kokeessa jotkut tutkijat toimittivat jyrsijöille, kuten hiirille ja hamstereille, paljon erilaisia ​​paikkoja, esineitä, tapahtumia ja muuta tietoa, ja sitten tarkkailivat heidän reaktioitaan ja näiden tietojen käsittelyä. Todettiin, että nämä jyrsijät toimivat erittäin hyvin muistissa ja pystyivät jopa muistamaan monia erilaisia ​​tietoja ja kohtauksia, jopa paremmin kuin useimmat ihmiset.

Joten miksi jyrsijät muistivat paremmin kuin muut eläimet? Tämä on erottamaton jyrsijöiden elinympäristöstä. Nämä pienet eläimet elävät usein vaarallisissa ympäristöissä, joten niiden on opittava sopeutumaan nopeasti ja selviytymään. Eloonjäämisen ja lisääntymisen ylläpitämiseksi jyrsijöiden on ymmärrettävä muutoksia ympäröivässä ympäristössä ja tietoa, kuten muiden eläinten ja kasvien toimintaratoja. Tämä edellyttää heiltä erinomaisia ​​havainnointi- ja muistikykyjä, jotta he voivat sopeutua paremmin elinympäristöön.

Lisäksi jyrsijöiden elämäntapa ja käyttäytymistottumukset voivat myös auttaa parantamaan heidän muistiaan. Jotkut tutkimukset ovat osoittaneet, että jyrsijät haluavat kerätä ja varastoida esineitä, jotka voivat edistää heidän muistiaan ja avaruudellista havainnointiaan. Lisäksi jyrsijät haluavat myös suorittaa joitain rutiinitoimintoja, kuten liikkua tiettyä reittiä ja suorittaa samanlaisia ​​​​tehtäviä. Tämä rutiinikäyttäytyminen voi myös auttaa heitä vahvistamaan muistiaan ja tottumusten muodostumiskykyään.

Biologisessa maailmassa jyrsijöillä on ainutlaatuinen muisti, ja heillä on vahvat havainnointi-, muisti- ja sopeutumiskyvyt. Meille jyrsijöiden muisti voi vastata oppimis- ja muistikykyämme. Voimme oppia jyrsijöiltä, ​​että niin kauan kuin pysymme varovaisina, jatkamme oppimista ja kerrytämme opinnoissamme ja elämässämme, meillä voi myös olla samat erinomaiset muisti- ja tottumusten muodostumiskyvyt kuin jyrsijöillä. Tämä osoittaa, että meidän on parannettava muistiamme, ja Cistanche voi parantaa muistiamme merkittävästi, koska Cistanche voi myös säädellä välittäjäaineiden tasapainoa, kuten nostaa asetyylikoliinin ja kasvutekijöiden tasoa, jotka ovat erittäin tärkeitä muistille ja oppimiselle. Lisäksi Cistanche deserticola voi parantaa verenkiertoa ja edistää hapen toimitusta, mikä voi varmistaa, että aivot saavat riittävästi ravintoa ja energiaa, mikä parantaa aivojen elinvoimaa ja kestävyyttä.

Napsauta Tunne muistin lisäys

Sylinterin (valkoinen), pyramidin (punainen) ja kuution (musta) muotoiset (12 cm korkeat) puuesineet (identtisinä kolmoisina) olivat kiinteitä ja tarpeeksi painavia tehdäkseen niistä liikkumattomia jyrsijöille. NORT suoritettiin 16. päivänä 3 vaiheessa (S): sopeutuminen (S1), hankinta (S2) ja uuden kohteen tunnistustutkimus (retentio) (S3). S1:n aikana kolme peräkkäistä päivää ennen kokeita suoritettiin, jotta rotat havaitsivat aluksen tyhjän pohjapohjan (5 minuuttia). Kun vaihe S1 oli suoritettu, yksittäinen eläin totutettiin mihin tahansa kiinteiden esineiden joukkoon oppimisvaiheessa (S2).

Kaksoiskaltaiset esineet asetettiin kahteen mielivaltaisesti valittuun aluksen vastakkaiseen kulmaan (9 cm - 11 cm etäisyys sivuvalleista). Erikseen jyrsijä sijoitettiin aluksen keskelle kahta kiinteää esinettä vastapäätä ja sen annettiin löytää kaksi samanlaista esinettä 5 minuutin ajan. Tutkintatoimena oletettiin kuonon ohjaamista kohteen lähelle enintään 2–3 cm:n etäisyydeltä tai fyysistä kosketusta esineeseen kuonolla.

S2:n jälkeen jyrsijä pidettiin kotihäkissä, jota seurasi 60 minuutin koeajo (ITR).

Mikä tahansa S2:ssa tarjottu yksittäinen kiintoaine vaihdettiin toisella kiinteällä esineellä, ja jyrsijät esiteltiin uudelleen kaksoiskappaleille, toisin sanoen tutun esineen kopio ja eri esine.. Kaikki kohteiden yhdistämiset ja paikat korvattiin vähentää todennäköisiä ennakkoluuloja, jotka johtuvat halusta tiettyihin asetuksiin tai esineisiin. Astia ja kiinteät esineet pyyhittiin huolellisesti (etyylialkoholi 15 % ja kuiva kangas) jokaisen tutkimuksen jälkeen hajumerkkien hillitsemiseksi. S2:n ja S3:n kunkin kohteen löytämiseen kulunut aika dokumentoitiin sekuntikellolla. .e kesto, joka kului S2:n kahden vastaavan kohteen tutkimiseen (I1 � Ii1 + Ii2) ja kesto, joka kului kahden erilaisen kohteen, eli tutun ja erilaisen, tutkimiseen S3:ssa (I2 � Ii3 + Ib) nauhoitettiin. Eri kohteen tutkimiseen käytetyn keston ja tutun kohteen tutkimisen keston vaihtelu (Ib–Ii3 � DI) paljastaa muistin säilymisen.

DI (diskriminaatioindeksi)/S3:n kesto(t) tutkittaessa sekä tutustuttua että uutta (muutettua DI) parantaa osittaisuutta varianssien avulla täydellisessä tutkimuksessa ja ilmaisee halukkuutta eri kohteisiin toisin kuin tutut {DI � (Ib–Ii3) )/(Ii3 + Ib)}. Muistelevaa muistia arvioitiin kvantifioimalla jyrsijöiden taito erottaa tutut/uutiset kohteet S3:ssa ja se ilmoitettiin DI:ksi (muutettu S3:n yleistä tutkimusjaksoa varten) [24].

2.9. MorrisWater Maze (MWM). Noudatettiin standardiprotokollaa Kumarin ja Bansalin [25] mukaisesti. MWM arvioi spatiaalisen muistin uintikokeiden avulla, joissa jyrsijä löytää pakotien piilotetulle korokkeelle.

Musta värillinen pyöreä säiliö (halkaisija 2 m, korkeus 0,6 m) oli täytetty vedellä (25 ± 1 astetta) 0,3 m syvyyteen. .is vesisäiliö erotettiin myötäpäivään 4 samanlaiseen alueeseen (R1, R2, R3 ja R4) käyttämällä kahta nailonkuitua, jotka oli kiinnitetty kohtisuoraan säiliön yläkehälle.

Säiliön alueelle R4 sijoitettiin taikka (10,5 cm × 10,5 cm) veden alle (1 cm veden alle). .e-piste säilyi ennallaan koko hankinta-ajan. Jokaiselle rotalle esiteltiin neljä sarjahankintakierrosta (5 minuuttia ITR) päivittäin. Jyrsijä päästettiin varovasti säiliön seinämää päin olevaan vesialtaaseen, ja paikka vaihteli jokaisen kokeen aikana R1-R4:stä, R2-R1:stä, R3-R2:sta ja R{{ 13}}R3 päivinä 1-4, vastaavasti, ja vedenalaisen podiumin havaitsemiseen annettiin 120 sekuntia. Jyrsijät lepäävät palkintokorokkeella 20 sekuntia.

Epäonnistuminen lavaa havaittaessa 120 sekunnissa osoitti rottien manuaalisen sijoittamisen lavalle, minkä jälkeen he saivat olla 20 sekuntia. Pakenemislatenssiaika (ELT) on kesto(t), jonka aikana piilotettu kaltevuus löydettiin vesisäiliöstä. Tilaoppimista leimattiin päivä yksi vs. päivä neljä ELT.

Koetintutkimuksessa (5. päivä) jyrsijät tutkivat säiliötä 120 sekuntia, mutta heiltä riistettiin koroke. Koko säiliössä (4 aluetta) käytetty keskimääräinen kesto kirjattiin. Keskimääräinen kesto, joka kului R4:ssä (TSTQ: kohdekvadrantissa käytetty aika) piilotetun podiumin luotaessa, katsottiin vertailumuistin indeksiksi. .säiliön vertaileva asetus suhteessa visuaalisina merkkeinä toimiviin laboratorion esineisiin ja tutkijan asema säilyi häiriöttömänä [26].

2.10. Biokemiallisten parametrien arviointi. Käyttäytymistutkimusten päätyttyä terapeuttien täydelliset aivot kerättiin ja asetettiin jauhetuille jääkuutioille, mitä seurasi kylpeminen pakastettavalla steriloidulla suolaliuoksella (isotoninen 308 mOsmol/l NaCl) jäänteiden ja veren poistamiseksi.

Koko aivot homogenisoitiin välittömästi pakasteerotuspuskurissa (pH 7,4), jonka koostumus oli 215 mM D-mannitolia, 20 mM 2-[4-(2-hydroksietyyli) )piperatsin-1-yyli]etaanisulfonihappo, 1 mM 1, 2-bis[2-[bis(karboksimetyyli)amino]etoksi]etaania, 75 mM sakkaroosia ja 0,1 % BSA:ta. Homogenaattia sentrifugoitiin 4 asteessa käyttämällä 13 000 x g:n voimaa 5 minuutin ajan. Pelletti hylättiin, ja supernatantti erotettiin kahteen osaan ja sentrifugoitiin uudelleen (4 astetta) 13 000 x g:n voimalla 5 minuuttia. Raaka mitokondriopelletti erotettiin ja sentrifugoitiin uudelleen erotuspuskurissa 1,2-bis[2-[bis(karboksimetyyli)amino]etoksi]etaanilla nopeudella 12 500 x g 11 minuuttia (4 astetta). Näin saatu puolikiinteä sakka, joka sisälsi kontaminoitumattomia mitokondrioita, suspendoitiin uudelleen erotuspuskuriin (pH 7,4), joka sisälsi 75 mM sakkaroosia, 20 mM 2-[4-(2-hydroksietyyli)piperatsiinia-1- yyli]etaanisulfonihappo ja 215 mM D-mannitoli [27].

Myöhemmin kokoaivohomogenaatin mitokondriofraktiota käytettiin biokemiallisten markkerien määrittämiseen standardimenetelmillä.

2.11. Mitokondriokompleksin arviointi

2.11.1. NADH: Ubikinonioksidoreduktaasiaktiivisuus.

Kompleksi I:n (NADH-dehydrogenaasi) aktiivisuuden erotus määritettiin (nmol NADH hapetettua/minuutti/mg proteiinia) Kingin ja Howardin [28] tekniikkaa noudattaen. NAD+:n oksidatiiviseen muodostumiseen NADH:sta liittyy sytokromi c:n pelkistyminen. Määritysseos koostui sytokromi c:stä (10,5 mM), 6 mM -nikotiiniamidiadeniininukleotidista (DPNH), joka oli liuotettu käyttäen 2 mM diglysiinipuskuria, ja diglysiinipuskurista (0,2 M, pH 8,5).

Liukeneva mitokondriofraktio sisällytettiin määrityssekoitukseen reaktion laukaisemiseksi. Optisen tiheyden (OD) vaihtelua aallonpituudella λmax � 550 nm seurattiin 120 sekunnin ajan.2.11.2. Sukkinaatti: Ubikinonioksidoreduktaasiaktiivisuus..e sukkinaattidehydrogenaasin (kompleksi II) aktiivisuuden nopeus määritettiin (nmol sukkinaattia hapettunut/minuutti/mg proteiinia) noudattamalla Kingin [29] tekniikkaa.

Meripihkahapon hapettumisen laukaisee valeelektronivastaanotin, kaliumsyanoferraatti (K3Fe(CN)6). .e. määritysseos koostui meripihkahaposta (0,63 M), 1 % BSA:sta, K3Fe(CN)6:sta (0.036 M) ja Na+-K+:sta [PO4]2--puskuri (0,23 M, pH 7,6). Liukeneva mitokondriofraktio sisällytettiin määrityssekoitukseen reaktion laukaisemiseksi. OD:n vaihtelua aallonpituudella λmax � 420 nm seurattiin 120 sekunnin ajan.

2.12. Oksidatiivisen stressin biomarkkerien määritys2.12.1. iobarbituurihapporeaktiiviset aineet (TBARS). TBARS:n arvioimiseksi (nmol per mg proteiinia) [30], analysointiyhdistelmä (päätelmämäärä ~4 ml), joka sisältää 0,10 ml homogenisoitua aivot, 1,51 ml 4, 6-dihydroksi-2-merkaptopyrimidiiniä (0,8 %), 200 µl SLS (8,18 %), 1,49 ml jääetikkaa (21 %, pH 3,51) ja 0,71 ml deionisoitua vettä vesihauteessa lämmitys 96 asteessa 60 minuuttia.

15:1-suhde butyylialkoholi/atsabentseeni (5,1 ml) lisättiin analyysisekoitukseen, joka sentrifugoitiin 4, 000 × gpowerilla (10 minuuttia), ja supernatantti eristettiin. Kaksisäteisellä UV1700-spektrofotometrillä (Shimadzu, Japani) kromoforimalondialdehydi-4, 6-dihydroksi-2-merkaptopyrimidiini OD arvioitiin aallonpituudella (λmax � 532 nm) ja . 105/M/cm (molaarinen ekstinktiokerroin) käytettiin laskettaessa 4,6-dihydroksi-2-merkaptopyrimidiiniadduktia.

2.12.2. Alennettu glutationi (Lc-glutamyyli-L-kysteinyyliglysiini) tasot. Ellmanin [31] menetelmä otettiin käyttöön L-glutationi (GSH) -pitoisuuden arvioimiseksi. Testisekoitus, joka sisälsi homogenaattia (1,1 ml) ja 1 ml 4 % 2-hydroksi-5-sulfobentsoehappoa (5-SSA), sentrifugoitiin (4 astetta) 11 minuuttia teholla 2 500 × g .

Myöhemmin 2,8 ml Na+-K+[PO4]2--puskuria (51,2 mM, pH 7,77) ja {{10}},21 ml 3-karboksi{{13 }}nitrofenyylidisulfidia (0,12 mM, pH 7,89) sekoitettiin edellä erotetun supernatantin (0,12 ml) kanssa. Tripeptidi (µmolGSH per mg proteiinia) kvantifioitiin kaksoissädeUV1700-spektrofotometrillä (λmax 412 nm). levittämälläε � 1,36 × 104/M/cm.

2.12.3. Glutationiperoksidaasiaktiivisuus. Glutationiperoksidaasin (GPx) (EC 1.11.1.9) aktiivisuus arvioitiin toteuttamalla Mohandasin et ai. [32]. .eanalyze sekoitus, joka sisälsi 100 µl 10 % homogenaattia, 100 µl natriumatsidia (1,11 mM), 100 µl EDTA (1,13 mM), 40 µl glutationi-disulfidi-disulfidi (GSR, 1 IU/ml) (EC1.8.1.7), 10 µl H2O2 (0,28 mM), 40 µl Lc-glutamyyli-L-kysteinyyliglysiiniä (1,2 mM), 100 µl koentsyymi II:lla pelkistetty tetranatriumsuola (0,22 mM) ) ja 0,12 M 1,49 ml Na+-K+ [PO4]2--puskuria (pH 7,4) 2000 µl:n kokonaismääränä. Koentsyymi II:lla pelkistetyn tetranatriumin menetys aallonpituudella λmax � 340 nm dokumentoitiin 25 asteen lämpötilassa.

GPx-nopeus laskettiin nmol:na hapetettu NADPH/minuutti/mg proteiinia käyttämällä ε � arvoa 6,22 × 103/M/cm.

2.12.4. Superoksididismutaasiaktiivisuus. SOD:n (EC1.15.1.1) vaikutusnopeus (yksikköä per mg proteiinia) tarkasteltiin Kakkar et ai. [33]. .e reaktioseos sisälsi 0,3 ml homogenaattia, 100 µl 5-metyylifenatsiniummetyylisulfaattia (197 µM) ja 1,3 ml natriumdifosfaattia käyttäen 200 µl -nikotiiniamidiadeniinidinukleotidia (DPNH)(780) ja pysäytettiin 60 sekuntia myöhemmin käyttämällä 1 ml glacialCH3COOH:ta tässä sekoituksessa.

Syntynyt kromogeenimäärä laskettiin merkitsemällä muistiin värin voimakkuus aallonpituudella λmax� 56{{10}} nm.2.12.5. Katalaasiaktiivisuus. Katalaasin (EC1.11.1.6) toiminnan nopeuden arvioimiseksi OD-ero (λmax � 240 nm) analysoidusta sekoituksesta (3.{28}} ml), joka sisältää 50 µl tutkimusnäytettä, 1,22 ml H2O2 (0,03 M) Na+-K+ [PO4]2- -puskurissa (pH 7,91, 0,06 M) ja 1,63 ml 0,06 M Na+-K+ [PO4]{{33} } puskuri (pH 7,1) tallennettiin. Katalaasiaktiivisuus (µmol H2O2-hajoamista minuutissa per mg aivojen proteiinia) laskettiin käyttämällä ε � 43,6/M/cm [34].

2.12.6. Koko nitriittitaso. .e tekniikka, Sastry et al.[35] toteutettiin arvioimaan koko aivojen nitriittejä (μmolper mg aivoproteiinia). Koeputkissa, jotka sisälsivät 100 µl tutkimusnäytettä, 145 mg kupari-kadmiumiamalgaamia, 500 µl H2CO3-puskuria (pH 8,89), 0,44 M 100 µl NaOH, ja 119,8 mM sentrifugoitiin 50 µl 40 SO4 µl:ssa. 10 minuuttia, ja ylimääräinen ylempi neste (supernatantti) eristettiin.

Griess-kemikaalia (50 µl) sisällytettiin 100 µl:aan ylimääräistä nestettä. 60 minuutin inkubaation jälkeen OD (λmax 548 nm aallonpituus) todettiin käyttämällä kaksisäteistä UV1700 spektrofotometriä (Shimadzu). Tyypillinen typpihapon natriumkäyrä (0,02–0,2 mM) suunniteltiin ja koko nitriitti tasattiin.

2.12.7. Proteiinien kokonaismäärän määritys. Kokonaisproteiinitaso (mg/ml homogenaattia) laskettiin käyttämällä naudan seerumin albumiinin epätyypillistä kaarevuuskäyrää, jonka liuoksen vahvuus vaihteli välillä 0,3 - 3,8 mg/ml. Tutkimusyhdistelmä järjestettiin 250 µl:lla homogenaattia, 5,1 ml:lla Lowryn reagenssia, Na+-K+ [PO4]2--puskurilla (900 µl) ja 1,1 N 500 µl FCR:llä. OD:n poikkeama havaittiin aallonpituudella λmax � 650 nm [36].

2.13. Aivoosien histopatologia. Painovoimasyötetyn diffuusiojärjestelmän avulla rotat diffuusoitiin sydämensisäisesti (vasemman kammion kautta) 1 0 % neutraalilla puskuroidulla formaldehydiliuoksella (10 % NBF) ja nukutettiin akuutisti. Hippokampus ja aivokuoren sektorit upotetaan kiinnitysaineeseen (10:1 kiinnitysaine: kudososuus), nimittäin 10 % NBF:ään yhdeksi viikoksi (4 astetta), mukana 0,04 % natriumatsidia (pH 7,4).

Etyylialkoholia (70%) käytettiin 4 asteessa pidettyjen kiinteiden kudososien pakkausliuoksena. Mikrotomileikkuria (pyörivä tyyppi) käytettiin ohuiden osien (8,0 μm) saamiseksi, jotka sitten sävytettiin väriaineella hematoksyliinilla ja eosiinilla (H&E). Diat tehtiin pysyviksi käyttämällä DPX-hartsia, jotka myöhemmin peitettiin ja tarkastettiin optisella mikroskoopilla (binokulaarinen) × 40 suurennuksella.

2.14. Tilastollinen analyysi. Ammattitaitoinen kokeilija sokkoi eläinryhmille annetut erilaiset lääkehoito-ohjelmat tarkasti ja arvioi tiedot. Poikkeamat eivät olleet aineistossa pragmaattisia (Grubbin testi), ja Kolmogorov–Smirnov-testi ja Levenen testi vahvistivat muuttujien normaalijakauman ja varianssin homogeenisuuden (HOV p > 0.05, Levenen testi).

Muussa tapauksessa epätasaisen varianssin tapauksessa (HOV p < {0}}.05, Levenen testi), Welchin ANOVA (p < 0.05, F'-tilasto) ja Games–Howell post hoc -testejä voidaan soveltaa. Normaalisti jakautuneiden muuttujien keskiarvoja tarkasteltiin ja ne yhdistettiin kaksisuuntaisen varianssianalyysin (ANOVA) yksisuuntaisilla tai toistuvilla mittareilla. ANOVA:n tapauksessa tulokset ovat merkitseviä (p < 0,05) F-tilastoissa, käytettiin useita vertailutestejä, nimittäin Tukeyn HSD (rehellinen merkitsevä ero) tai Bonferroni. Tilastollisen merkitsevyyden katsottiin olevan p < 0,05, ja tulokset ilmoitettiin keskiarvona ± keskiarvon standardivirhe (SEM).

3. Tulokset

3.1. DSM:n tulokset kehon painoon (g), ruokavalioon ja veteen QA-ICV:tä saaneiden rottien nauttimiseen. Ruumiinpainot, rehu ja veden nauttiminen analysoitiin viikoittain päivästä 1 alkaen. Merkittävä väheneminen (p < 0,001) ruumiinmassassa (g), rehun ja veden saannissa päivinä 7, 14 ja 21 oli pragmaattista rotilla, joille annettiin QA-ICV-injektio päivänä 1 verrattuna tosham-kollegoihin. (Kuva 2).

DSM:n (100 mg/kg) annostelu aiheutti merkittävän ruumiinpainon nousun (päivä 7p < 0.05, päivä 14 p < {{14} }.01, päivä 21 p < {{20}},001), rehu (päivä 7p < 0,05, päivä 14 p < 0,01, päivä 21 p < 0,001) ja vedenotto (päivä 7 p < 0,01, päivä 14 p < 0,05) rotilla QA-ICV:tä vastaan.

DSM (50 mg/kg) heikensi myös merkittävästi QA-ICV:n laukaisemaa painon laskua (päivä 21 p < 0.05) ja rehun saantia (päivä 7 p <) 0.{{20}}1) rotista verrattuna rottiin, jotka ovat saaneet QA-ICV-injektion. QA-ICV- ja DNP-käsitellyt rotat havaitsivat merkittävän ruumiinmassan (g) kasvun (päivä 7p < 0.05, päivä 14 p < 0.001, päivä 21 p < 0,001), rehu (päivä 7p < 0,001, päivä 14 p < 0,01, päivä 21 p < 0,001) ja vedenotto (päivä 7, 14, 21 p < 0,01) suhteessa rotiin, jotka pysyivät alttiina yksinäiselle QA-ICV:lle.

3.2. DSM:n vaikutus liikkumiseen, motoriseen koordinaatioon ja rottien kävelyyn QA-ICV:tä vastaan. Tässä tutkimuksessa QA-ICV tai lääkehoidot eivät vaikuttaneet eläinten liikkuvuuteen.

QA-ryhmässä ei havaittu merkittävää muutosta keskimääräisissä lukumäärissä 5 minuuttia kohden aktofometrilaitteissa verrattuna valeryhmään (kuvio 3(a)). Rotarod- ja jalanjälkianalyysiä käytettiin rottien sensorimotorisen suorituskyvyn ja kävelyn arvioimiseen.

Tulokset osoittivat, että QA-ICV haittasi merkittävästi (p < 0.001) rottien motorista koordinaatiota (Kuva 3(b)) ja kävelyä (Kuva 3(c)), mikä heijastuu pyörivältä akselilta putoamisen latenssin vähenemisenä. ja rottien askelpituus jalanjälkianalyysissä verrattuna tosham-vastineisiin.

QA + DSM50 ja QA + DSM100 -ryhmät osoittivat huomattavan lisäyksen laskuviiveessä (p < 0.05, p < 0,01) ja askelpituudessa (p < 0,05, p < 0,001) suhteessa QA-ryhmään.

DNP-hoito heikensi merkittävästi QA-ICV:tä ja laukaisi putoamislatenssin pienenemisen (p < 0.001) ja askelpituuden (p < 0,001) verrattuna rottiin, joille annettiin QA-ICV yksin. Lisäksi DSM-käsittely (100 mg/kg) osoitti merkittävää parannusta (p < 0,01) DSM:ään (50 mg/kg) verrattuna rotilla, jotka oli altistettu QA-ICV:lle.

For more information:1950477648nn@gmail.com