Abstrakti

Polysakkaridien korkean arvon saavuttamiseksiCistanche deserticolajäämiä, tässä tutkimuksessa käytettiin jäännöstä, joka jäi jäljelle fenyylietanoidiglykosidien uuttamisen jälkeen (patentoituun kalvoerotustekniikkaan perustuva teollinen prosessi,Patentti nro ZL200710102756.7, held by Hotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd., https://www.xjcistanche.com/about-us) as the raw material. We systematically investigated the differences in chemical structural characteristics and antioxidant activities among various polysaccharide fractions obtained through membrane separation. The results indicated significant variations in chemical composition and activity among polysaccharide fractions with different molecular weights. Utilising ultrafiltration membranes of varying molecular weight cutoffs (300 kDa, 50 kDa, 10 kDa) combined with alcohol precipitation, four distinct polysaccharide fractions were successfully prepared: >300 kDa (nimeltään CTP 1), 50–300 kDa (CTP 2), 10–50 kDa (CTP 3) ja<10 kDa (CTP 4). Monosaccharide composition analysis indicated that all four fractions primarily contained mannose, rhamnose, galacturonic acid, glucose, galactose, and arabinose, but their proportional ratios differed. Fourier-transform infrared spectroscopy confirmed that all fractions exhibited typical characteristic polysaccharide absorption peaks. Scanning electron microscopy results demonstrated that ultrafiltration membranes with different pore sizes significantly altered the aggregation state and surface roughness of the polysaccharides by retaining components of varying molecular weights. This morphological difference may be related to intermolecular interactions and the sieving effect during ultrafiltration. In antioxidant activity assays, CTP 1 showed the optimal performance, achieving DPPH radical scavenging rates exceeding 61% and ABTS⁺ radical scavenging rates surpassing 95% at 8 mg/mL. All four fractions demonstrated appreciable antioxidant activity. This study confirms that membrane separation technology can effectively fractionate polysaccharides from Cistanche deserticolajäännös. Tutkimus tarjoaa teoreettisen pohjan ja aineistoa, joka tukee yrttijäämien resurssien kierrätystä ja polysakkaridikomponenttien arvokasta kehitystä.

Avainsanat: Cistanche deserticola; polysakkarideja; antioksidanttiaktiivisuus; kalvo erottaminen tekniikka; rakenneanalyysi

 

Membrane Separation Technology Patent Holding Wecistanche Headquarters

 

 

 

 

 

 

Johdanto

Cistanches Herba(Cistanche), kuivattu mehevä varsi, jossa on suomulehtiäCistanche deserticolaYC Ma (aavikon cistanche) taiCistanche tubulosa(Schenk) Wight (CTP), tallennetaan ensinShennong Bencao Jing (Shennongin Materia Medican klassikko). Tyypillisenä Kiinan perinteisten tonic-kiinalaisten lääkkeiden edustajana ja elintarvike-lääketieteessä homologisena aineena sitä tuotetaan pääasiassa luoteis-aavikko- ja autiomaa-alueilla, kuten Xinjiangissa ja Sisä-Mongoliassa, mikä ansaitsee sille "Aavikon ginsengin" maineen. Se tonisoi munuaisten yangia, ravitsee munuaisten yiniä, hyödyttää esanssia ja verta sekä kostuttaa suolistoa ummetuksen lievittämiseksi [2-3]. Sen sisältämillä fenyylietanoidiglykosideilla on merkittävää biologista aktiivisuutta ja ne ovat tärkeimpiä nykyisessä teollisessa tuotannossa uutettuja aineita. Louhinnan jälkeen jäännökseen jää kuitenkin suuri määrä hyödynnettäviä aineita, jotka heitetään pois jätteeksi, mikä ei pelkästään aiheuta resurssihävikkiä vaan mahdollisesti myös kuormittaa ympäristöä. Siksi jäännöksen arvokkaalla kierrätyksellä on suuri merkitys kiinalaisten lääkeresurssien tehokkaalle kehittämiselle ja ympäristöystävälliselle kehitykselle.

Polysakkaridit tärkeimpinä aktiivisina komponentteinaCistanche, niillä on erilaisia ​​farmakologisia vaikutuksia, kuten antioksidanttisia, ikääntymistä estäviä, hepatoprotektiivisia, anti-inflammatorisia, immunomodulatorisia ja kasvaimia estäviä vaikutuksia [4-7], ja niitä voidaan käyttää laajasti lääkekehityksessä sekä elintarvikkeissa ja terveystuotteissa. Aiemmat tutkimukset ovat optimoineet louhintaprosessia laajasti ja suorittaneet alustavia aktiivisuusarviointejaCistanchepolysakkarideja, mutta systemaattinen tutkimus polysakkarideista jäännöksissä fenyylietanoidiglykosidiuuton jälkeisessä jäännöksessä on edelleen niukkaa, erityisesti puuttuu syvällinen analyysi jäännöspolysakkaridien tehokkaista erotus- ja fraktiointitekniikoista sekä aktiivisuuseroista eri fraktioiden välillä, mikä rajoittaa suuresti kokonaishyötyarvon parantamista.Cistancheresursseja.

Polysakkariditutkimuksen alalla luokittelemattomilla raakapolysakkarideilla on ongelmia, kuten sekakomponentteja, epäselviä aktiivisuusosuuksia ja epäselviä kohteita, mikä tekee vaikeaksi paljastaa tarkasti niiden antioksidanttisten, immunomoduloivien ja muiden toimintojen aineellisen perustan. Samaan aikaan epäpuhtaudet, kuten proteiinit, pigmentit ja epäorgaaniset suolat raakapolysakkarideissa, häiritsevät myös niiden aktiivisuuden arviointia ja sovellusten kehittämistä. Perinteisillä menetelmillä, kuten pylväskromatografialla, on korkea resoluutio, mutta niitä on vaikea suurentaa, kun taas alkoholisaostusfraktiointi on karkeaa ja siihen liittyy ympäristöriskejä. Kalvoerotustekniikka, jonka edut ovat korkea hyötysuhde, ympäristöystävällisyys ja tarkka fraktiointi, osoittaa suurta potentiaalia polysakkaridien erottamisessa ja puhdistuksessa. Se mahdollistaa polysakkaridikomponenttien tarkan fraktioinnin kalvojen läpi, joilla on erilaiset molekyylipainorajat, mikä tarjoaa ihanteellisen teknisen tuen polysakkaridien "molekyylipaino-aktiivisuus"-rakenteen ja aktiivisuuden suhteen paljastamiseen [8]. Tang et ai. [9] onnistuneesti puhdistettu kolme polysakkaridikomponenttia suoraanLentinus edodesvesiuutteet käyttämällä 2,5 kDa:n, 5 kDa:n ja 10 kDa:n ultrasuodatuskalvojen yhdistelmää. Erityisesti tässä tutkimuksessa käytetty kalvoerotustekniikka on suojattu keksintöpatentilla (Patentti nro ZL200710102756.7), jonka omistaa Hotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd. (https://www.xjcistanche.com/about-us), joka keskittyy fenyylietanoidiglykosidia sisältävien raaka-aineiden tuotantoonCistanchekäyttämällä kalvoerotusta, mikä tarjoaa vankan teollisen perustan tutkimuksellemme. Tutkimusryhmämme kehittämät tuotteet perustuvat systemaattisiin tutkimuksiin fenyylietanoidiglykosideistaCistanche tubulosa[10] ovat siirtyneet koetuotantovaiheeseen. Tämän perusteella tässä tutkimuksessa käytetään jäännöstäCistanchefenyylietanoidiglykosidiuuton jälkeen raaka-aineena käyttää ultrasuodatuskalvoja yhdistettynä alkoholisaostukseen jäännöksen polysakkaridien fraktioimiseksi ja puhdistamiseksi sekä analysoi systemaattisesti eri molekyylipainoisten polysakkaridifraktioiden kemiallisten rakenteellisten ominaisuuksien ja antioksidanttiaktiivisuuden eroja. Tavoitteena on avata uusia polkuja resurssien kierrätykseenCistanchejäämiä, parantaa teollista ketjua ja luoda teoreettinen ja kokeellinen perusta uusien, luonnollisiin polysakkarideihin perustuvien terveysvaikutteisten elintarvikkeiden tai antioksidanttien kehittämiselle.

 

50 % ekinakosidi 10 % akteosidi Cistanche-uutteen lisäravinteet uutettu kalvoerotusteknologialla

Tarkista listaus

Wecistanchen tukipalvelu - Lisätietoja yhteistyöstä
Sähköposti:wallence.suen@wecistanche.com

 

 

1 Materiaalit ja menetelmät

1.1 Materiaalit ja välineet

Cistanche deserticolajäännöksen toimittiHotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd. (Hotan, Kiina), joka on valmistettu fenyylietanoidiglykosidien teollisesta uuttamisesta patentoidun kalvoerotusteknologian avulla (Patentti nro ZL200710102756.7; https://www.xjcistanche.com/about-us). Glukoosistandardi ostettiin Tianjin Guangfu Fine Chemical Research Institutesta. m-hydroksibifenyyli (98 %), Coomassie Brilliant Blue G-250, dialyysipussit (MD44), DPPH-radikaalinpoistokapasiteetin määrityspakkaus, ABTS-radikaalinpoistokapasiteetin määrityspakkaus, superoksidianionien puhdistuskapasiteetin määrityspakkaus ja kokonaisantioksidanttikapasiteetti, joka ostettiin Be Science Technology Ltd:ltä. Galakturonihappo (98 %), naudan seerumialbumiini (98 %) ja askorbiinihappo (Vc) ostettiin Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd:ltä. Muut kemialliset reagenssit olivat analyyttistä laatua.

UV-19001 UV-Vis-spektrofotometri (Shimadzu Instruments Co., Ltd.); YP10002 elektroninen vaaka (Shanghai Hengji Scientific Instruments Co., Ltd.); SQP elektroninen vaaka (Sartorius Scientific Instruments Co., Ltd.); EYELA-vesihaude (SB-1200); CA-1111 jäähdytysveden kiertolaite (Shanghai Ailang Instruments Co., Ltd.); SHZ-D kiertovesityhjiöpumppu (Shanghai Jinfu Experimental Instrument Equipment Co., Ltd.); N-1100 pyöröhaihdutin; XCLD-10FE pakastekuivain (Shanghai Xingchuang Scientific Instrument Equipment Co., Ltd.); BONA-GM-18C orgaanisen kalvon erotuksen kokeellinen kone; 300 kDa, 50 kDa, 10 kDa ultrasuodatuskalvot (polyeetterisulfoni, Jinan Bona Co., Ltd., Shandong); TGL-16A sentrifugi (Changsha Pingfan Instruments); BT25S analyyttinen vaaka (Sartorius Scientific Instruments); Dionex U3000 korkean suorituskyvyn nestekromatografi (Thermo Fisher Scientific, USA); LC-DCY-12GK typpipuhallin (Shanghai Lichen Bangxi Instrument Technology Co., Ltd.); UPH-I-10T ultrapuhdas vesijärjestelmä (Chengdu Ultra Pure Technology Co., Ltd.); DF-101S infrapunaspektrometri (Shimadzu Instruments Co., Ltd.); Zeiss Supra55VP pyyhkäisyelektronimikroskooppi (Carl Zeiss (Shanghai) Management Co., Ltd.).

 

Cistanchen tiedot

1.2 Koemenetelmät

1.2.1 Raakaöljyn talteenottoCistanchePolysakkaridit

Alustavista esitesteistä saadun uuttoprosessin mukaan 150 gCistanche deserticolajäännös punnittiin, uutettiin 100 asteessa 3 tuntia kiintoaine-neste-suhteella 1:20 g/ml, sentrifugoitiin nopeudella 4000 r/min 10 minuuttia ja supernatantti (polysakkaridipitoisuus: 4,4 mg/ml) kerättiin polysakkaridiuutteen saamiseksi.

1.2.2 Fraktiointi ja erottaminenCistanchePolysakkaridit

Vesipitoinen uuteCistanchepolysakkarideille suoritettiin ultrasuodatusfraktiointi käyttämällä 300 kDa:n, 50 kDa:n ja 10 kDa:n ultrasuodatuskalvoja olosuhteissa, joissa paine oli 0,18 MPa ja lämpötila 40 astetta. Retentaatit ja permeaatit kerättiin erikseen, väkevöitiin pyöröhaihdutuksella ja lisättiin 95 % etanolia 80 %:n lopullisen etanolipitoisuuden saavuttamiseksi. Seos asetettiin 4 asteeseen 24 tunniksi, sitten sentrifugoitiin nopeudella 4000 rpm 10 minuuttia, ja supernatantti heitettiin pois sakan saamiseksi. Sakka liuotettiin uudelleen veteen, dialysoitiin 3500 Da:n dialyysipussia vastaan ​​48 tunnin ajan ja pakastekuivattiin, jolloin saatiinCistanche polysaccharides. Four fractions were obtained by collecting retentates and permeates: >300 kDa (nimeltään CTP 1), 50–300 kDa (CTP 2), 10–50 kDa (CTP 3) ja<10 kDa (CTP 4).

1.2.3 Polysakkaridikemiallisten komponenttien määritys

1.2.3.1 Kokonaissokeripitoisuuden määrittäminen

Näytteiden polysakkaridipitoisuuden määrittämiseen käytettiin fenoli-rikkihappomenetelmää [11]. Standardikäyrä valmistettiin käyttämällä glukoosia 0,1 mg/ml glukoosistandardiliuoksen kanssa. Tarkat tilavuudet 0,4 ml, 0,8 ml, 1,2 ml, 1,6 ml ja 2,0 ml standardiliuosta siirrettiin 10 ml:n tulpallisiin koeputkiin, ja vettä lisättiin 2,0 ml:n kokonaistilavuuteen. Sitten lisättiin 1,0 ml juuri valmistettua 6-prosenttista fenoliliuosta, sekoitettiin hyvin ja 5,0 ml väkevää rikkihappoa lisättiin nopeasti putken seinämää pitkin. Seosta ravisteltiin, kuumennettiin 90-asteisessa vesihauteessa 15 minuuttia, sitten poistettiin ja jäähdytettiin huoneenlämpötilaan. Käyttämällä nollanäytteenä tislattua vettä absorbanssi mitattiin 490 nm:ssä UV-Vis-spektrofotometrillä. Saatu standardikäyrä oli y=16.196x+0.0834, R2=0.999. Valmistettiin 0,1 mg/ml polysakkaridiliuos ja kunkin polysakkaridifraktion absorbanssi mitattiin samalla menetelmällä. Kunkin fraktion kokonaissokeripitoisuus laskettiin substituoimalla standardikäyrään.

1.2.3.2 Proteiinipitoisuuden määrittäminen

Näytteiden proteiinipitoisuuden määrittämiseen käytettiin Coomassie Brilliant Blue -menetelmää [12]. Standardikäyrä valmistettiin käyttämällä naudan seerumin albumiinia 0,1 mg/ml standardiproteiiniliuoksella. Standardiproteiiniliuos laimennettiin pitoisuuksiksi 0,02, 0,03, 0,05, 0,07 ja 0,09 mg/ml. Sitten koeputkiin lisättiin 1 ml kutakin konsentraatiota standardiproteiiniliuosta, sen jälkeen 5,0 ml Coomassie Brilliant Blue kromogeenistä reagenssia ja sekoitettiin ravistamalla. Käyttämällä tislattua vettä nollanäytteenä absorbanssi mitattiin 595 nm:ssä 10 minuutin reaktion jälkeen. Saatu standardikäyrä oli y=0.0034x+0.7673, jossa R2=0.996. Jokaisen polysakkaridifraktion absorbanssi mitattiin samalla menetelmällä ja kunkin fraktion proteiinipitoisuus laskettiin substituoimalla standardikäyrään.

1.2.3.3 Uronihappopitoisuuden määrittäminen

Näytteiden uronihappopitoisuuden määrittämiseen käytettiin m-hydroksibifenyylimenetelmää [13]. Standardikäyrä valmistettiin käyttämällä galakturonihappoa 0,1 mg/ml galakturonihapon standardiliuoksen kanssa. Standardiliuos laimennettiin pitoisuuksiksi 0,01, 0,02, 0,03, 0,05 ja 0,1 mg/ml. Sitten 1 ml kutakin standardiliuoskonsentraatiota lisättiin koeputkiin ja 6 ml natriumtetraboraatti-rikkihappoliuosta lisättiin jäävesihauteen olosuhteissa, sekoitettiin ravistamalla, kuumennettiin kiehuvassa vedessä 5 minuuttia, jäähdytettiin huoneenlämpötilaan ja lisättiin 0,1 ml m-hydroksibifenyylireagenssia, sekoitettiin perusteellisesti huoneenlämpötilassa ja annettiin seistä 3 minuuttia. Käyttämällä tislattua vettä nollanäytteenä absorbanssi mitattiin aallonpituudella 525 nm. Saatu standardikäyrä oli y=7.5339x+0.0494, jossa R2=0.995. Valmistettiin 0,1 mg/ml polysakkaridiliuos ja kunkin polysakkaridifraktion absorbanssi mitattiin samalla menetelmällä. Kunkin fraktion uronihappopitoisuus laskettiin substituoimalla standardikäyrään.

 

Wecistanche Munufacturer

1.2.4 Monosakkaridikoostumuksen määritys

Kromatografiset olosuhteet: Thermo U3000 -nestekromatografiajärjestelmä, joka on varustettu Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18 -kolonnilla (4,6 mm × 250 mm, 5 μm). Liikkuva faasi oli asetonitriili:fosfaattipuskuri (12 g/l kaliumdivetyfosfaattia, pH säädetty arvoon 6,8 2 mol/l NaOH:lla) tilavuussuhteessa 17:83 isokraattisella eluutiolla. Virtausnopeus oli 0,8 ml/min, kolonnin lämpötila oli 30 astetta, detektioaallonpituus oli 250 nm ja injektiotilavuus 10 µl.

Standardiliuoksen valmistus5 mg ramnoosia, arabinoosia, galaktoosia, glukoosia, ksyloosia, mannoosia, galakturonihappoa, glukuronihappoa, glukosamiinihydrokloridia ja galaktosamiinihydrokloridia ja 10 mg fukoosia punnittiin peräkkäin, liuotettiin ja laitettiin 10 ml:ksi tilavuusstandardikantapulloon.

Näyteliuoksen valmistus5 mg kutakin neljästä polysakkaridifraktiosta punnittiin, lisättiin 1 ml:aan 2 mol/l TFA-liuosta ja kuumennettiin 121 asteessa 2 tuntia. Typpi huuhdeltiin liuoksen kuivaamiseksi. Sitten lisättiin 3 ml metanolia pesua varten ja liuos kuivattiin uudelleen; tämä metanolipesuvaihe toistettiin 2-3 kertaa. Jäännös liuotettiin 1 ml:aan steriiliä vettä ja siirrettiin kromatografiseen pulloon testausta varten. Sitten lisättiin 0,2 ml polysakkaridihydrolysaattia tulpalla varustettuun kartiomaiseen sentrifugiputkeen, minkä jälkeen lisättiin 0,2 ml 0,5 mol/l natriumhydroksidiliuosta ja 0,5 ml 0,5 mol/l PMP-metanoliliuosta. Seosta vorteksoitiin ja annettiin reagoida 70-asteisessa vesihauteessa 1 tunti. Reaktion jälkeen lisättiin 0,2 ml 0,5 mol/l suolahappoa natriumhydroksidin neutraloimiseksi, 1 ml kloroformia lisättiin ja seosta vorteksoitiin uuttamista varten kolme kertaa ylimääräisen PMP:n poistamiseksi. Kloroformikerros heitettiin pois, otettiin 0,3 ml vesipitoista kerrosta ja lisättiin vettä 1 ml:n lisäämiseksi. Sitten 0,2 ml kutakin 11 monosakkaridistandardista derivatisoitiin käyttämällä samaa menetelmää [14-15].

1.2.5 Fourier-muunnos infrapunaspektroskopia (FT-IR) -analyysi

Sopiva määrä kutakin neljästä polysakkaridifraktiosta asetettiin infrapunaspektrometrin ATR-lisälaitteen näyteasteeseen, ja FT-IR-mittaukset suoritettiin Fourier-muunnos infrapunaspektrofotometrillä taajuusalueella 4000–400 cm⁻¹ [16].

1.2.6 Pyyhkäisyelektronimikroskoopin (SEM) analyysi

Neljän polysakkaridifraktion morfologia analysoitiin SEM:llä [17]. Pieni määrä kutakin polysakkaridifraktiota kiinnitettiin tasaisesti ohuelle kuparilevylle ja kultajauhekerros haihdutettiin näytteen pinnalle ionisputterilla. Pintamorfologia havaittiin jännitteellä 5,00 kV.

1.2.7 In vitro -antioksidanttiaktiivisuuden määritys

1.2.7.1 DPPH· radikaalinpoistokapasiteetin määrittäminen

Neljän polysakkaridifraktion pitoisuudet asetettiin arvoihin 1, 2, 3, 4 ja 8 mg/ml, ja myös positiivinen kontrolliryhmä (Vc) asetettiin samoihin pitoisuuksiin. Määritys suoritettiin DPPH·-radikaalinpoistokapasiteetin määrityssarjan ohjeiden mukaisesti.

1.2.7.2 Superoksidianionien poistokapasiteetin määrittäminen

Neljän polysakkaridifraktion pitoisuudet asetettiin arvoihin 0,5, 1, 2, 4 ja 8 mg/ml, ja myös positiivinen kontrolliryhmä (Vc) asetettiin samoihin pitoisuuksiin. Määritys suoritettiin superoksidianioninpoistokapasiteetin määrityssarjan ohjeiden mukaisesti.

1.2.7.3 Antioksidanttikapasiteetin määrittäminen

Neljän polysakkaridifraktion pitoisuudet asetettiin arvoihin 0,5, 1, 2, 4 ja 8 mg/ml, ja myös positiivinen kontrolliryhmä (Vc) asetettiin samoihin pitoisuuksiin. Määritys suoritettiin kokonaisantioksidanttikapasiteetin määrityssarjan ohjeiden mukaisesti.

1.2.7.4 ABTS⁺-radikaalinpoistokapasiteetin määrittäminen

Neljän polysakkaridifraktion pitoisuudet asetettiin arvoihin 0,5, 1, 2, 4 ja 8 mg/ml, ja myös positiivinen kontrolliryhmä (Vc) asetettiin samoihin pitoisuuksiin. Määritys suoritettiin ABTS-radikaalinpoistokapasiteetin määrityssarjan ohjeiden mukaisesti.

1.3 Tietojen käsittely

Kukin koe toistettiin kolme kertaa samoissa olosuhteissa ja tulokset ilmaistiin keskiarvona ± standardipoikkeama. SPSS 21.0 -ohjelmistoa käytettiin merkitsevyysanalyysiin, yksisuuntaista ANOVAa yksitekijäanalyysiin; P < 0,05 katsottiin tilastollisesti merkitseväksi. Piirtämiseen käytettiin Origin 2024:ää ja GraphPad Prism 10.1.2:ta.

 

Korkealaatuiset raaka-aineet

Viitteet

[1] Osavaltion farmakopeakomissio.Kiinan kansantasavallan farmakopea, osa I[M]. Peking: China Pharmaceutical Technology Press, 2020.

[2] GUO Y, CAO L, ZHAO Q ym. Polysakkaridin alustavat karakterisoinnit, antioksidantti- ja hepatoprotektiivinen aktiivisuusCistanche deserticola [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2016, 93: 678-685.

[3] ZHANG XY, JIANG QW, YANG SH, et al. Kemometrinen analyysi ja integroitu farmakologinen lähestymistapa raaka-aineen ja prosessoidun vaikutuksen ja mekanismin tulkitsemiseenCistanche tubulosa [J]. Journal of Ethnopharmacology, 2024, 328.

[4] CHENG N, WANG H, HAO H, et ai. Polysakkaridikomponenttien tutkimuksen edistyminenCistanche deserticolamahdollisina farmaseuttisina aineina [J].European Journal of Medicinal Chemistry, 2023, 245.

[5] TAO J, ZHONG X, LIN H, et ai. Suvun polysakkaridien mahdollisuudet, haasteet ja näkymätCistancheterapeuttisina aineina ikääntymiseen liittyviin sairauksiin: Katsaus [J].International Journal of Biological Macromolecules, 2025, 312.

[6] ZHOU S, FENG D, ZHOU Y ym. Analyysi vaikuttavista ainesosista ja terveyssovelluksistaCistanche [J]. Ravitsemuksen rajat, 2023, 10.

[7] ZHANG X, LIU Z, LI Z, et al. Ferroptoosireitit: paljastaa hermoja suojaavan voimanCistanche deserticolafenyylietanoidiglykosidit [J].Journal of Ethnopharmacology, 2024, 333.

[8] CAI M, XING H, TIAN B, et al. Lajiteltujen polysakkaridien ominaisuudet ja väsymystä estävä vaikutusGanoderma lucidumerotettu kaskadikalvotekniikalla [J].Hiilihydraattipolymeerit, 2021, 269: 118329.

[9] TANG W, LIU C, LIU J et ai. Polysakkaridin puhdistaminenLentinus edodesvesiuute kalvoerotuksen avulla ja sen kemiallinen koostumus ja rakenne karakterisointi [J].Ruoka hydrokolloidit, 2020, 105.

[10] Ainur Memetiturxun, GAO L, HUO SX, et ai. Verbaskosidin keskipakouuttoprosessin optimointi Box-Behnken-vastepinnan menetelmällä [J].Chinese Journal of Modern Applied Pharmacy, 2022, 39(23): 3086-3091.

[11] JIN W, ZHOU H, ZHAO H, et ai. Polysakkaridien eristäminen, in vitro antioksidanttikapasiteetti, hypoglykeeminen aktiivisuus ja immunoaktiivisuuden arviointiCoriandrum sativumL [J/OL].Antioksidantit, 2025, 14(2): 149. https://doi.org/10.3390/antiox14020149

[12] SPLITTGERBER AG, SOHL J. Epälineaarisuus proteiinimäärityksissä Coomassie blue -värin sitomismenetelmällä [J].Analyyttinen biokemia, 1989, 179(1): 198-201.

[13] CAI M, XING HY, XU J et ai. Arvioitu erottaminenGanoderma lucidumRaakapolysakkaridit kalvoteknologiaa käyttäen ja niiden antioksidanttiaktiivisuuden vertailu [J].Elintarviketeollisuuden tiede ja teknologia, 2021, 42(10): 29-35.

[14] GUO Y, WANG L, LIU K et al. Nopea ja tarkka UHPLC-menetelmä monosakkaridien määrittämiseksi eri lähteistä peräisin olevista polysakkarideistaRadix Astragalija sen immuuniaktiivisuusanalyysi [J/OL].Molekyylit, 2024, 29(10): 2287. https://doi.org/10.3390/molecules29102287

[15] DU C, LIU X, ALGADI H, et ai. Polysakkaridien uuton optimointi, monosakkaridikoostumus ja eri lajikkeiden antioksidanttiaktiivisuuden analyysiGastrodia elataBl. ilmaosat [J].Biomassan muuntaminen ja biojalostamo, 2023, 14(23): 29353-29365.[16] HONG T, YIN JY, NIE SP, et ai. Infrapunaspektroskopian sovellukset polysakkaridien rakenneanalyysissä: edistyminen, haaste ja perspektiivi [J].Elintarvikekemia: X, 2021, 12.[17] ZHOU S, HUANG G. Polysakkaridin uuttaminen, rakenteen karakterisointi ja biologinen aktiivisuus kookoskuoresta [J].Kemialliset ja biologiset teknologiat maataloudessa, 2023, 10(1).