Tekijän panokset:SB ja YEK suunnittelivat ja suunnittelivat katsauksen rakenteen ja sisällön. SB analysoi tiedot ja kirjoitti käsikirjoituksen. EEM, MS, HB, NM, LK ja YEK osallistuivat kirjoittamiseen – arvosteluun ja editointiin. YEK ohjasi hanketta. Kaikki kirjoittajat ovat lukeneet käsikirjoituksen julkaistun version ja hyväksyneet sen.

Cistanchen glykosidi voi myös lisätä SOD:n aktiivisuutta sydämen ja maksan kudoksissa ja vähentää merkittävästi lipofussiinin ja MDA:n pitoisuutta kussakin kudoksessa, poistaen tehokkaasti erilaisia ​​reaktiivisia happiradikaaleja (OH-, H₂O₂ jne.) ja suojaamalla DNA-vaurioilta. OH-radikaalien toimesta. Cistanche-fenyylietanoidiglykosideilla on vahva vapaita radikaaleja poistava kyky, suurempi pelkistyskyky kuin C-vitamiini, ne parantavat SOD:n aktiivisuutta siittiösuspensiossa, vähentävät MDA-pitoisuutta ja niillä on tietty suojaava vaikutus siittiöiden kalvon toimintaan. Cistanche-polysakkaridit voivat lisätä SOD:n ja GSH-Px:n aktiivisuutta D-galaktoosin aiheuttamien kokeellisesti vanhenevien hiirten punasoluissa ja keuhkokudoksissa sekä vähentää MDA- ja kollageenipitoisuutta keuhkoissa ja plasmassa sekä lisätä elastiinipitoisuutta. hyvä huuhteluvaikutus DPPH:lle, pidentää hypoksian aikaa vanhenevilla hiirillä, parantaa SOD:n aktiivisuutta seerumissa ja viivyttää keuhkojen fysiologista rappeutumista kokeellisesti vanhenevilla hiirillä Solumorfologisen rappeutumisen yhteydessä kokeet ovat osoittaneet, että Cistanchella on hyvä antioksidanttikyky ja sillä on potentiaalia olla lääke ihon ikääntymisen sairauksien ehkäisyyn ja hoitoon. Samaan aikaan Cistanchen ekinakosidilla on merkittävä kyky poistaa DPPH-vapaita radikaaleja ja kyky poistaa reaktiivisia happilajeja ja estää vapaiden radikaalien aiheuttamaa kollageenin hajoamista, ja sillä on myös hyvä korjaava vaikutus tymiinin vapaiden radikaalien anionien vaurioihin.

Napsauta Cistanche-tablettien edut

【Lisätietoja:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Rahoitus:Tätä tutkimusta rahoitti OCP Phosboucraâ Foundation, Laâyoune, Marokko, apuraha nro PR008.

Institutionaalisen tarkastuslautakunnan lausunto:Ei sovellettavissa.

Ilmoitettu suostumus:Ei sovellettavissa.

Tietojen saatavuusilmoitus:Tietojen jakaminen ei koske tätä artikkelia, koska tämän tutkimuksen aikana ei luotu tai analysoitu datajoukkoja.

Eturistiriidat:Kirjoittajat vakuuttavat, että tutkimus tehtiin ilman kaupallisia tai taloudellisia suhteita, jotka voitaisiin tulkita mahdollisiksi eturistiriidiksi.

Viitteet

1. Kasvisoluteknologia – kumppanisi kasvikudosviljelyssä. Kasvisoluteknologian soveltaminen kosmetiikkateollisuudessa. Saatavilla verkossa:

2. Ensisijaisuustutkimus. Kasviuutteiden markkinakoko nousee noin 22,49 miljardiin dollariin vuoteen 2030 mennessä.

3. Ensisijaisuustutkimus. Kasviuutteiden markkinakoko on noin 22,49 miljardia dollaria vuoteen 2030 mennessä.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Kasvien kantasolut kosmetiikassa: nykyiset suuntaukset ja tulevaisuuden suunnat. Future Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, A.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Kasvisoluviljelmä kehittyvänä teknologiana aktiivisten kosmeettisten ainesosien valmistukseen. Eng. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, CA; García-Lara, S. In vitro -kasvien kudosviljely: keinot biologisten aktiivisten yhdisteiden tuotantoon. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Kasvien bioteknologisten lähestymistapojen edistyminen bioaktiivisten yhdisteiden leviämiseen ja tuotantoon. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Ihon ikääntymistä aiheuttavat ympäristöstressit. Mekanistiset näkemykset. Edessä. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomia, iho (integumentti), epidermis; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Ihon ikääntymisen molekyylimekanismit ja ikääntymistä estävät lähestymistavat. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Bioaktiiviset yhdisteet ihon terveydelle: katsaus. Ravinteet 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Skin-Resident synnynnäiset lymfoidisolut – ihon synnynnäiset huoltajat ja säätelijät. Trends Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK SLC- ja ABC-kuljettajien ihon nykytila ​​ja niiden suhde hikiaineenvaihduntaan ja ihosairauksiin. Proteomes 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkers of Cellular Senescence and Skin Aging. Edessä. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Ihon muutokset ikääntymisen aikana. In Biochemry and Cell Biology of Ageing: Osa II Kliininen tiede; Springer: Berliini/Heidelberg, Saksa, 2019; Nide 91, s. 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, A.; Richter, K. Oksidatiivinen stressi ikääntyvässä ihmisen ihossa. Biomolecules 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. Fernblock ehkäisee näkyvän ja infrapunasäteilyn aiheuttamia ihosoluvaurioita. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Hapettumistapahtumat ja ihon ikääntyminen. Aging Res. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Ultraviolet Photobiology in Dermatology. Ultraviolettivalo ihmisten terveydessä, sairauksissa ja ympäristössä; Springer: Berliini/Heidelberg, Saksa, 2017; Osa 996, s. 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Kasviravinnosta peräisin olevien bioaktiivisten komponenttien mahdolliset terveyshyödyt: Yleiskatsaus. Foods 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmitrieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. Ximenia Americana Var.:n lehtiuutteen fytokemiallinen profilointi. Caffra ja sen antioksidantti-, bakteeri- ja ikääntymistä estävät toiminnot in vitro ja Caenorhabditis Elegansissa: kosmeettinen ja ihotauti. Oksid. Med. Cell. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Bioaktiiviset kasviperäiset aineet 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Kasvi- ja eläinpohjaisten antioksidanttien rakenne, tehokkuus, mekanismit ja sovellukset: Katsaus. Antioksidantit 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Polyfenolien ja antioksidanttien kestävä tuotanto kasvien in vitro -viljelmillä. In Bioprosessing of Plant In vitro Systems; Springer: Berliini/Heidelberg, Saksa, 2018; s. 225–269.

26. Namdeo, A. Kasvisolujen saaminen sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden tuotantoon: Katsaus. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Kasvisoluviljelmien bioprosessointi kohdeyhdisteiden massatuotantoa varten. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, MJ-hedelmien laatu, antioksidanttikapasiteetti ja luomu- ja perinteisesti kasvatettujen mustikoiden flavonoidipitoisuus. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Terpenoidien tuotanto ja suunnittelu kasvisolukulttuurissa. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ Säännellyn alijäämäkastelun vaikutus eri tomaattilajikkeiden laatuparametreihin, karotenoideihin ja fenoliin (Solanum Lycopersicum L.). Food Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. Vertaileva fysiologinen ja transkriptionaalinen tutkimus karotenoidien biosynteesistä valkoisessa ja punaisessa greippissä (Citrus Paradisi Macf.). Tree Genet. Genomit 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, TC; Show, PL Viimeaikaiset edistysaskeleet Haematococcus Pluvialis -bakteerin astaksantiinin biojalostamossa. Bioresour. Technol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Viljelyparametrit vaikuttavat karotenoidien bioteknologiseen tuotantoon edullisilla substraateilla: Katsaus. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Kasvien polyfenolit: kemialliset ominaisuudet, biologiset toiminnot ja synteesi. Angew. Chem. Int. Ed. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. Resveratrolin heterologinen tuotanto bakteeri-isännissä: nykyinen tila ja näkökulmat. World J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Resveratrolin tuotanto rekombinanttimikro-organismeissa. Appl. Ympäristö. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Engineering Yeast for High Level Production of Stilbenoid Antioksidantit. Sci. Tasavalta 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gaspar, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis Stilbenen tuotantoa varten. Proceedings of the 28th International Conference on Polyphenols 2016, Wien, Itävalta, 11. heinäkuuta 2016; DTU Denmark: Kongens Lyngby, Tanska, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gätgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Corynebacterium Glutamicum -alustakannan rakentaminen stilbeenien ja (2S)-flavanonien tuotantoa varten. Metab. Eng. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: Katsaus kasvilähteistä, synteesistä, stabiilisuudesta, modifikaatiosta ja elintarvikesovelluksesta. J. Sei. Food Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Malonyyli-CoA-aineenvaihdunnan säätely synteettisten antisense-RNA:iden kautta luonnontuotteiden tehostetun biosynteesin avulla. Metab. Eng. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA Fytoeenin bioaktiivisuus ja hyötyosuus sekä strategiat sen tuotannon parantamiseksi. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, tehokas strategia bioaktiivisten korkean lisäarvon yhdisteiden biotekniseen tuotantoon kasvisolutehtaissa. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Taksolin ja siihen liittyvien taksoidien bioteknologian tuotanto: nykytila ​​ja näkymät. Anti-Cancer Agents Med. Chem. Entinen. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Coptis Japonica -solujen korkeatiheysviljely lisää berberiinin tuotantoa. J. Chem. Technol. Biotechnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Podofyllotoksiinin tuotanto Podophyllum Hexandrumin kasvisoluviljelmillä bioreaktorissa. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Valon vaikutus karotenoideihin Karotenogeneesigeenien tuotanto ja ilmentyminen neljän genotyypin sitruskalluksessa. Acta Physiol. Tehdas. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Näkemyksiä Centella Asiatica (L.) -kallusuutteen antioksidanttivaikutuksista ja ihon ikääntymistä ehkäisevästä mahdollisuudesta. Sci. Tasavalta 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Pentasyklisen triterpenoidirikkaan kallusuutteen vaikutus. Ex Spach normaalien ihmisen ihon fibroblastien elinkelpoisuudesta, morfologiasta ja lisääntymisestä. Molecules 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Trans-kanelihappo vaimentaa UVA-indusoitua valon ikääntymistä estämällä AP-1-aktivaatiota ja indusoimalla Nrf{10}}-välitteisiä antioksidanttigeenejä ihmisen ihon fibroblasteissa. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW:n ajankohtaisten ikääntymistä estävien ainesosien valmistus, karakterisointi ja biologinen aktiivisuus Citrus Junos Callus -uutteessa. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Diplectria Barbatan (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos -uutteen hyödylliset vaikutukset ikääntymiseen ja antioksidantteihin in vitro ja in vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Granny Smith -omenahedelmien kallus- ja solususpensioviljelmien perustaminen ja niiden uutteiden antityrosinaasiaktiivisuus. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Fytokemiallisesti standardoidun oliivin (Olea Europaea L.) lehtiuutteen valosuojauspotentiaalin arvostaminen UVA-säteilytetyissä ihmisen ihon fibroblasteissa. Molecules 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. Ginsenoside RG3:n uusi rooli ikääntymisen estämisessä mitokondrioiden kautta ultraviolettisäteilytetyissä ihmisen ihofibroblasteissa. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Piper Cambodianumin ikääntymistä estävät vaikutukset P. Fourn. Ote normaaleista ihmisen ihon fibroblastisoluista ja haavan paranemismalli hiirillä. Clin. Interv. Ikääntyminen 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Pueraria Candollei Var. Mirifica-suspensiosolut lupaavat antioksidanttipotentiaalia, mikä viittaa ikääntymistä estävään toimintaan. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Pyrus Pyrifolia Var Cultan kasvikallusuutteen ikääntymistä estävät toimet. Trop. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Tiarella Polyphylla D. Don Callus -uutteen vaikutukset valovanhenemiseen ihmisen esinahan fibroblasteissa Hs68-soluissa. Nat. Tuot. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Kasvien vegetatiivisten osien korvaaminen kallussoluuutteilla: tapaustutkimus Woodfordia Fruticosa Kurzin kanssa – tehokas ainesosa ihonhoitovalmisteissa. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Fuzhuan-Brick-teevesiuutteen suojaaminen UVB-indusoidulta valovanhenemiselta MAPK:iden/Nrf:n2- välittämän MMP:n-1 vähentämisen kautta. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. Lindera Erythrocarpan lucidonin ihoa suojaavat vaikutukset Nrf{10}}välitteisten antioksidanttigeenien induktion kautta UVA-säteilytetyissä ihmisen ihon keratinosyyteissä. J. Funct. Foods 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Ilo.; Choi, H.; Lee, JH Leontopodium Alpinum (Edelweiss) -kalluskulttuuriuutteen ikääntymistä estävät vaikutukset transkriptioprofiilin avulla. Genes 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Kolmen riisilajikkeen kallusviljelmän antioksidantit ja ikääntymistä estävät toimet. Kosmetiikka 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Amla (Phyllanthus Emblica L.) -hedelmäuutteen mahdollinen käyttö suojaamaan ihon keratinosyyttejä tulehdukselta ja apoptoosilta UVB-säteilyn jälkeen. Antioksidantit 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, kansanedustaja; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) bioaktiivisten yhdisteiden lähteenä: polyfenoliprofiili, sytotoksisuus ja sytoprotektiiviset ominaisuudet eri solulinjoissa. Edessä. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Pyrus Pyrifolia -kallusuutteen valmistus ja karakterisointi ja sen vaikutusten tutkiminen ihon uusiutumiseen. Kosmetiikka 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petruk, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Immbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Myrisitriinin ja 3-5-di-O-metyyligossypetiinin eristäminen Syzygium Samarangensesta ja niiden osallistumisen arviointi keratinosyyttien suojaamiseen oksidatiiviselta stressiltä Nrf-2-reitin aktivoinnin kautta. Molecules 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Inkivääri (Zingiber Officinale Roscoe)'Bentong' ja sen toissijaisten aineenvaihdunta- ja antioksidanttitoimintojen arviointi verrattuna perinteisesti levitettyyn kasviin. Plants 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Antosyaanipigmentin 1 (PAP1) tuotannon ektooppinen ilmentyminen parantaa ginsengin (Panax Ginseng CA Meyer) karvajuurien antioksidanttisia ja melanogeenisiä ominaisuuksia. Antioksidantit 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapan karvajuuriuutteet edistävät ihon depigmentaatiota moduloimalla melaniinin tuotantoa ja jakautumista. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petruk, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM malvidiini ja syanidiinijohdannaiset Açai Fruitista (Euterpe Oleracea Mart.) torjuvat UV-A:n aiheuttamaa oksidatiivista stressiä immortalized fibroblasteissa. J. Photochem. Photobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ Kasvisolujen seinämistä peräisin olevien peptidien ja sokereiden seos lisää kasvien puolustusreaktioita stressiin ja vaimentaa ikääntymiseen liittyviä molekyylimuutoksia viljellyissä ihosoluissa. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Z.; Park, SY; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris lievittää UVB-säteilyn aiheuttamaa ihovauriota estämällä MAPK/AP-1 ja aktivoimalla Nrf2-ARE-antioksidanttijärjestelmän. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Tomaatin kantasoluuute, joka sisältää antioksidanttiyhdisteitä ja metallikelatointitekijöitä, suojaa ihosoluja raskasmetallien aiheuttamilta vaurioilta. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Isatis Tinctoria L.:n karvajuuriviljelmät, jotka parantavat flavonoidien tuottavuutta ja geenien ilmentymistä ja niihin liittyvää antioksidanttiaktiivisuutta, kitosaanin saaminen. Ind. Crops Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma, kansanedustaja; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Toissijainen aineenvaihdunta lääkkeiden kasvien in vitro -kulttuurit: Strategiat, lähestymistavat ja rajoitukset saavuttaa korkeamman tuoton. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Biomassan ja bioaktiivisten yhdisteiden tuotanto Polygonum multiflorumin satunnaisista juuriviljelmistä käyttämällä Air Lift -bioreaktoreita. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Hairy Root Cultures: Sopiva biologinen järjestelmä kasvien toissijaisten aineenvaihduntareittien tutkimiseen. Eng. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Salvia Officinalis L.:n karvajuuriviljelmien perustaminen rosmariinihapon tuotantoa varten. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Dracocephalum Moldavican karvaiset juuret: Rosmariinihappopitoisuus ja antioksidanttipotentiaali. Acta Physiol. Tehdas. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elite Ocimum Basilicumin karvaiset juuret uutena rosmariinihapon ja antioksidanttien lähteenä. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Vertaileva tutkimus rosmariinihappopitoisuudesta joissakin Labiatae-heimon kasveissa. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Kasvikudosviljelmät ainesosien lähteinä ihonhoitosovelluksiin. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. Karvajuurikulttuurien moninaisuus: tuottelias mahdollisuudet. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, M.-A.; Lee, K.; Kim, K.; Hyun, TK Antosyaniinin ylituotanto ginsengin karvajuurissa tehostaa niiden antioksidanttista, antimikrobista ja elastaasiaktiivisuutta. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Opuntia- ja muiden kaktuslajien mikrolisäys kainaloiden versojen leviämisen kautta: kattava katsaus. Edessä. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. Lavendereiden (Lavandula spp.) in vitro -kulttuuri ja sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden tuotanto. Biotechnol. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. Mikrolisäys ei vaikuta ainoastaan ​​matalapensasmustikan (Vaccinium Angustifolium Ait.) hedelmämorfologiaan, vaan myös sen lääkeominaisuuksiin. Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Kanada, 17.–19. kesäkuuta 2013; s. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Suleiman, M.; Abbas, S.; Wink, M. Lääkekasvin Ziziphora Tenuior L. in vitro -lisäys ja sen antioksidanttiaktiivisuuden arviointi. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Soorimuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Valon aiheuttama masennuslääkeyhdisteiden tuotanto Hypericum Hookerianum Wight & Arn.:n (Hypericaceae) etioloiduissa versoviljelmissä. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Salvia Officinalis L.:n in vitro -viljelmistä saatujen uutteiden antioksidanttiaktiivisuus. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. Fenolipitoisuuden in vitro leviäminen ja karakterisointi sekä Cichorium Pumilum Jacqin antioksidantti- ja antimikrobiset vaikutukset. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. Caralluma tuberculatan in vitro leviäminen ja antioksidanttipotentiaalin arviointi. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Alocasia Longiloba Miq:n mikrolisäys ja pellolla kasvatettujen kasvien etanoliuutteiden vertailukelpoiset antioksidanttiominaisuudet, in vitro lisääntynyt ja in vitro -peräinen kallus. Plants 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plant Callus: Mechanisms of Induktion and Repression. Plant Cell 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, Dedifferentiation, Totipotency, Somatic Embryogenesis: Mitä nämä termit tarkoittavat molekyylikasvibiologian aikakaudella? Edessä. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Plant Cell Culture Technologies: Lupaavat vaihtoehdot arvokkaiden sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden tuottamiseen. Arabi. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Plant Cell Culture Technology: A New Ingredient Source. CARE 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Cell Culture: An Innovative Approach for Production of Plant Actives; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Iso-Britannia, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Biomassan ja bioaktiivisten yhdisteiden tuotanto Panax Quinquefolium L.:n ja Glycyrrhiza Uralensis Fisch -solususpensioviljelmistä. Biomassan ja bioaktiivisten yhdisteiden tuotannossa käyttäen bioreaktoriteknologiaa; Springer: Berliini/Heidelberg, Saksa, 2014; s. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Onosma Bulbotrichomin kalluskulttuurin tuotanto aktiivisena farmaseuttisena ainesosana. Iran. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Flavonoidien ja polysakkaridien tuotanto lisäämällä elitsitoria Glycyrrhiza Uralensis Fisch:n erilaisiin soluviljelyprosesseihin. Acta Physiol. Tehdas. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW Metyylijasmonaatti stimuloi 20-hydroksiekdysonin tuotantoa "Achyranthes Bidentatan" solususpensioviljelmissä. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos Soluviljelyuute suojaa UV-vaurioilta. Cosmet Toilet 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Uusi suunniteltu dermis in vitro -valovauriotutkimukseen. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Verbaskosidin, uuden antioksidantin, aktiivisuus- ja stabiliteettitutkimukset dermokosmeettisissa ja farmaseuttisissa ajankohtaisissa formulaatioissa. Molecules 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis ryppyjä ehkäiseviin ja ihoa kiinteyttäviin sovelluksiin. Kosmeettinen. WC. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Lääkekasvien solususpensioviljelmät: Farmaseuttiset sovellukset ja korkeasatoiset strategiat halutuille sekundaarisille aineenvaihduntavälineille. Crit. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Työkalu elintarvikkeiden bioaktiivisen koostumuksen rikastamiseen. Molecules 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Molekyylinäkökohdat varhaisessa vaiheessa sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden kasveissa. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: Biotechnological Tool Enhanced Production of Secondary Metabolites in Hairy Root Cultures. Eng. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Laajaspektristen monokromaattisten valojen interaktiiviset vaikutukset Solanum Xanthocarpum -kallusviljelmien fytokemialliseen tuotantoon, antioksidanttisiin ja biologisiin aktiviteetteihin. Molecules 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Abiotinen stressin aiheuttama vaikutus tehostaa Cardoon Callin tuottavuutta erikoistuneiden aineenvaihduntatuotteiden biotehtaina. Antioksidantit 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Gene-to-Metabolite Network for Biosynthesis of Lignans in MeJA-elicited Isatis Indigotica Hairy Root Cultures. Edessä. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Bioaktiivisten yhdisteiden kertymisen parantaminen Orostachys Cartilaginous A. Bor -soluviljelmissä. Salisyylihapolla tapahtuvan eliminaation ja soluuutteen vaikutuksen kautta bioaktiiviseen aktiivisuuteen. Ind. Crops Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Elicitor-indusoitu biomassan ja farmaseuttisten fenoliyhdisteiden tuotanto taatelipalmun (Phoenix Dactylifera L.) solususpensioviljelmässä. Molecules 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Durán, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC Flavonoidituotannon optimointi Thevetia Peruvianan kasvisoluviljelmässä, joka on saatu aikaan metyylijasmonaatilla ja salisyylihapolla. Braz. Kaari. Biol. Technol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Methyl Jasmonate Elicitation Enhances Glycyrrhizin Production in Glycyrrhiza Inflata Hairy Roots Cultures. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Fenoliyhdisteiden kertymisen ja antioksidanttiaktiivisuuden stimulaatio Salvia Tebesana Bungen in vitro -kulttuurissa vastauksena nano-TiO2- ja metyylijasmonaattisyötteille. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Stilbeeniyhdisteiden parantaminen ja metyylijasmonaatin ja syklodekstriinin aiheuttaman maapähkinäkarvajuurikulttuurin anti-inflammatorinen aktiivisuus. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Antioksidanttiaineenvaihduntasolujen saaminen musa-lajeihin in vitro -versoviljelmässä sakkaroosia, lämpötilaa ja jasmonihappoa käyttämällä. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulation of Callus Growth and Secondary Metabolites in Different Thymus Species and Zataria Multiflora Micropropagated under ZnO Nanopartticles Stress. Biotechnol. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.-R. Hopeananohiukkaset, joita syntyy in vitro -kallusviljelmissä biomassan ja sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden kerääntymiseen Caralluma Tuberculatassa. Artif. Cells Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Hopeananohiukkasten vaikutus fenoliyhdisteiden tuotantoon ja biologiseen toimintaan Cucumis anguria -karvajuuriviljelmissä. Acta Biol. Hung. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yücesan, B.; Gürel, E.; Kausar, R.; Zia, M. CuO Nanohiukkaset vaikuttavat merkittävästi in vitro -kulttuuriin, stevioliglykosideihin ja Stevia rebaudiana Bertonin antioksidanttitoimintoihin. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanohiukkaset, joissa on suljettu tokoferoli: synteesi, karakterisointi ja kontrolloitu vapautuminen. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden tunnistaminen Ammi Majuksen in vitro -kulttuurissa, joka on käsitelty Elicitorsilla. IV International Symposium on In vitro -kulttuuria ja puutarhaviljelyä käsittelevä symposiumi, Tampere, 2.–7.7.2000; s. 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Biomassan ja teollisesti tärkeiden toissijaisten aineenvaihduntatuotteiden kestävä tuotanto hopean ja kullan nanohiukkasten synnyttämissä selfheal-soluviljelmissä (Prunella Vulgaris L.). Artif. Cells Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Diterpenoidtanshinonien tehokas tuotanto ja talteenotto Salvia Miltiorrhiza -karvajuuriviljelmissä in situ -adsorptiolla, -elitaatiolla ja puolijatkuvalla toiminnalla. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Biotic Elicitation for Scopolamine Production by Hairy Root Cultures of Datura Metel. Mol. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. Elicitaation vaikutukset saponiinin tuotantoon Panax Ginsengin soluviljelyssä. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Elicitors-vaikutus podofyllotoksiinin biosynteesin parantamiseen Linum-albumin suspensioviljelmissä. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Erilaisten Panax Ginsengin muunnettujen juurifenotyyppien saaminen esiin ginsenosidin tuotannon parantamiseksi. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Toissijaisten aineenvaihduntatuotteiden tuotanto solu- ja elinviljelmistä: strategioita ja lähestymistapoja biomassan parantamiseksi ja aineenvaihdunnan keräämiseksi. Plant Cell Tissue Organ Cult. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Rosaviinien kertymisen lisääminen Rhodiola Rosea L. Kasveissa, joita kasvatetaan in vitro esiasteruokinnassa. Agronomia 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album käyttäen koniferaldehydiä ja metyleenidioksikanelihappoa. Prep. Biochem. Biotechnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Hyperforiinin ja adhyperforiinin biosynteesi aminohappoprekursoreista Hypericum Perforatumin versoviljelmissä. Phytochemistry 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Parannettu ginsenosidien tuotanto ginsengin suspensioviljelmissä keskipitkän täydennysstrategian avulla. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Parannettu kofeiinihappojohdannaisten tuotanto Echinacea Purpurean suspensioviljelmissä keskipitkän täydennysstrategian avulla. Kaari. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Tehostettu taksolin tuotanto ja vapautuminen Taxus Chinensis -solususpensioviljelmissä valikoiduilla orgaanisilla liuottimilla ja sakkaroosisyötöllä. Biotechnol. Prog. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Bioengineeringin yleiskatsaus ja periaatteet: Omics-tekniikoiden ajurit. Omics Technologies ja Bio-Engineering; Elsevier: Amsterdam, Alankomaat, 2018; s. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Kasvien sekundaaristen aineenvaihduntatuotteiden tuotanto bioteknologisia työkaluja käyttämällä. Toinen. Metab.-Sources Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Aineenvaihduntatekniikan soveltaminen lääkekasvien alkaloidipitoisuuden parantamiseen. Metab. Eng. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Biotechnology for the Production of Plant Secondary Metabolites. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Tropaanialkaloidiaineenvaihdunnan säätely kasveissa ja kasvisoluviljelmissä. In Metabolic Engineering of Plant Secondary Metabolism; Springer: Berliini/Heidelberg, Saksa, 2000; s. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Kasvisoluviljelmä paklitakselin ja muiden taksaanien tuotantoa varten. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Secondary Metabolites of Medicinal Plants, 4 osasarja: Etnofarmakologiset ominaisuudet, biologinen aktiivisuus ja tuotantostrategiat; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, USA, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Immobilisaation vaikutus solujen kasvuun ja alkaloidisisältöön Eurycoma Longifolia Jackin soluaggregaattikulttuurissa. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90-93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Kitosanaasituotannon tehostaminen Gongronella Sp.:n solujen immobilisoinnilla. JG. Braz. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Podofyllotoksiinin tuotanto Juniperus Chinensisin immobilisoiduilla soluviljelmillä. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130-1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Tutkimukset joidenkin tärkeiden toissijaisten aineenvaihduntatuotteiden tuottamisesta lääkekasveista kasvikudosviljelmillä. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Current Approaches to Production of Secondary Plant Metabolites. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Living Between Two Worlds: Two-Phase Culture Systems Producing Plant Secondary Metabolites. Crit. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Ajmalisiinin lisäyksen ja hartsin lisäyksen ajoituksen vaikutus indolialkaloidien tuotantoon Catharanthus Roseus -soluviljelmistä. Biotechnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraiah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Tehostettu plumbagiinin tuotanto immobilisoiduissa Plumbago Rosea -soluissa Elicitationilla ja in situ -adsorptiolla. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Klvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In situ, Uuttostrategia vaikuttaa bentsofenantridiinialkaloidin tuotantovirtoihin Eschscholtzia Californican suspensiokulttuureissa. Biotechnol. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, M.-B.; Zhang, W.; Ruan, C. Merkittävästi parannettu Taxuyunnanine C:n tuotanto Taxus Chinensis -solususpensioviljelmissä prosessin tehostamalla toistuvaa herättämistä, sakkaroosin syöttämistä ja in situ -adsorptiota. World J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Tehostettu antrakinonien tuotanto adsorbenttikäsitellyistä Morinda Elliptica -solususpensioviljelmistä tuotantoalustan strategiassa. Prosessi Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Vastuuvapauslauseke/julkaisijan huomautus:Kaikkiin julkaisuihin sisältyvät lausunnot, mielipiteet ja tiedot ovat yksinomaan yksittäisten kirjoittajien ja avustajien, eivät MDPI:n ja/tai toimittajan (toimittajien) lausuntoja. MDPI ja/tai toimittaja(t) eivät ole vastuussa ihmisille tai omaisuudelle aiheutuvista vahingoista, jotka johtuvat sisällössä mainituista ideoista, menetelmistä, ohjeista tai tuotteista.

【Lisätietoja:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】