4. Materiaalit ja menetelmät

4.1. Kasvimateriaali

Tässä tutkimuksessa käytetyt afrikkalaiset S. aurea -siemenet hankittiin erikoisliikkeestä Italiasta. Taimet viljeltiin Cagliarin yliopiston (UNICA) kasvibiologian ja farmaseuttisen kasvitieteen laboratoriossa. Viiden viikon kuluttua ne sijoitettiin "Planta Medica" -kasvihuoneeseen lajin ekofysiologisten tarpeiden mukaisesti. Kasvit kerättiin sitten kahden vuoden kasvun jälkeen niiden kukinnan aikana. Antenniosat laitettiin välittömästi ilma-ilmanvaihtouuniin (FD 115, BINDER), kunnes ne olivat täysin kuivuneet (kun ne saavuttivat vakiopainon). Lahjakorttinäyte talletettiin Cagliarin yliopiston Herbarium Karalitanumiin (CAG), tositenumerolla (6/23.8/V1).

Cistanchen glykosidi voi myös lisätä SOD:n aktiivisuutta sydämen ja maksan kudoksissa ja vähentää merkittävästi lipofussiinin ja MDA:n pitoisuutta kussakin kudoksessa, poistaen tehokkaasti erilaisia ​​reaktiivisia happiradikaaleja (OH-, H2O₂ jne.) ja suojaamalla DNA-vaurioilta. OH-radikaalien toimesta. Cistanche-fenyylietanoidiglykosideilla on vahva vapaita radikaaleja poistava kyky, suurempi pelkistyskyky kuin C-vitamiini, ne parantavat SOD:n aktiivisuutta siittiösuspensiossa, vähentävät MDA-pitoisuutta ja niillä on tietty suojaava vaikutus siittiöiden kalvon toimintaan. Cistanche-polysakkaridit voivat lisätä SOD:n ja GSH-Px:n aktiivisuutta D-galaktoosin aiheuttamien kokeellisesti vanhentuvien hiirten punasoluissa ja keuhkokudoksissa sekä vähentää MDA- ja kollageenipitoisuutta keuhkoissa ja plasmassa sekä lisätä elastiinipitoisuutta. hyvä huuhteluvaikutus DPPH:lle, pidentää hypoksian aikaa vanhenevilla hiirillä, parantaa SOD:n aktiivisuutta seerumissa ja viivyttää keuhkojen fysiologista rappeutumista kokeellisesti vanhenevilla hiirillä Solumorfologisen rappeutumisen yhteydessä kokeet ovat osoittaneet, että Cistanchella on hyvä antioksidanttikyky ja sillä on potentiaalia olla lääke ihon ikääntymisen sairauksien ehkäisyyn ja hoitoon. Samaan aikaan Cistanchen ekinakosidilla on merkittävä kyky poistaa DPPH-vapaita radikaaleja ja sillä on kyky poistaa reaktiivisia happilajeja ja estää vapaiden radikaalien aiheuttamaa kollageenin hajoamista, ja sillä on myös hyvä korjaava vaikutus tymiinin vapaiden radikaalien anionien vaurioihin.

Napsauta Cistanche Tubulosa Supplement -kohtaa

【Lisätietoja: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

4.2. Eteeristen öljyjen analyysi

Eteerinen öljy saatiin 3 tunnin hydrotislauksella käyttäen Clevenger-tyyppistä laitetta Euroopan farmakopean ohjeiden mukaisesti [89]. Seuraava analyysi kaasukromatografialla liekki-ionisaatiodetektiolla (GC-FID) ja kaasukromatografialla/massaspektrometrialla (GC-MS) suoritettiin kohdan [13] mukaisesti. Lyhyesti sanottuna GC-analyysiin käytettiin HP 5 -kapillaarikolonnia, jonka kokeellinen menettely oli 82 minuuttia eri lämpötiloissa, vastaavasti 60 ◦C - 246 ◦C nopeudella 3 ◦C/min, jota pidettiin sitten 246 ◦C 20 min. Heliumia (puhtaus suurempi tai yhtä suuri kuin 99,9999 prosenttia) käytettiin kantokaasuna virtausnopeudella 1 ml/min. Yhteensä 1 µl laimennettua näytettä (1:1 00 n-heksaanissa, w/w) injektoitiin automaattisella näytteenottimella jakosuhteella 1:20. MS-olosuhteissa käytettiin 240 ◦C siirtolinjaa, 200 ◦C EI-ionilähdettä ja 150 ◦C kvadrupolilämpötilaa, ionisaatioenergialla 70 eV ja 3,2 pyyhkäisyä s-1 pyyhkäisyn m/z:llä. alue (30 - 480). MSD ChemStation -ohjelmistoa (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, USA) käytettiin kromatogrammien ja massaspektrien hallintaan ja kehittämiseen. Lopuksi saadut yhdisteet tunnistettiin NIST02- ja Adams-kirjastojen vertailulla [37,38]. Tulokset ristiintarkastettiin edelleen vertaamalla yhdisteiden kokeellista retentioindeksiä (RI) puolipolaarisiin faaseihin, jotka RI raportoi kirjallisuudessa. Kokeelliset RI:t määritettiin käyttämällä kahta n-alkaanien standardiseosta referenssinä (C8–C20 ja C21–C40, vastaavasti) lineaarisella interpoloinnilla [90]. Raportoitujen komponenttien prosenttiosuudet laskettiin GC-huippujen alueilla ilman FID-vastetekijäkorjausta.

4.3. Antifungaalinen toiminta

Seitsemästä dermatofyyttikannasta testattiin S. aurea EO:n antifungaalinen aktiivisuus. Vastaavasti kynsien ja ihon eristämisestä saatiin kolme kliinistä kantaa: Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 ja Microsporum canis FF1. Loput neljä dermatofyyttikantaa kuuluivat Colección Espanõla de Cultivos Tipoon (CECT): T. mentagrophytes var. interdigital CECT 2958, T. rubrum CECT 2794, T. verrucosum CECT 2992 ja M. gypseum CECT 2908. Kaikki kannat viljeltiin Sabouraud-dekstroosiagarissa (SDA) tai perunadekstroosiagarissa (PDA) ennen jokaista testiä puhtauden ja elävyyden varmistamiseksi.

EO:n minimaaliset estävät pitoisuudet (MIC) ja pienin tappava pitoisuus (MLC) suoritettiin CLSI-protokollan mikrolaimennusta varten ehdottamien modifikaatioiden mukaisesti [91]. Lyhyesti sanottuna EO laimennettiin DMSO:hon (5–0,32 µl/ml) ja lisättiin sitten steriileihin koeputkiin. Inokulaatti valmistettiin säätämällä sameus arvoon 0,5 McFarland ja laimennettiin sitten RPMI:hen-1640 ilman glutamiinia ja 3-(N-morfolino)propaanisulfonihapolla (MOPS) pH 7.{101} {10}} pitoisuuteen 1–2 × 104 CFU/ml, joka lisättiin sitten EO:ta sisältäviin koeputkiin. Sitten putkia inkuboitiin 7 päivää 30 ºC:ssa. Myöhemmin putkista arvioitiin sienikasvu, ja pienintä pitoisuutta, jossa ei havaittu kasvua, pidettiin vähimmäisinhiboivana pitoisuutena (MIC). Pienin pitoisuus, jossa ei havaittu kasvua, sen jälkeen, kun negatiiviset putket oli maljattu SDA:han 7 päiväksi 30 ºC:ssa, pidettiin pienimpänä tappavana pitoisuutena (MLC). Testattujen mikro-organismien herkkyyden säätelyyn käytettiin referenssiyhdistettä, flukonatsolia (Pfizer). Tulokset saatiin kolmesta riippumattomasta kokeesta, jotka suoritettiin kahtena rinnakkaisena, ja tulokset ilmaistiin keskiarvona. Mukaan otettiin myös negatiiviset ja positiiviset kontrollit, joita edusti siirrostamaton elatusaine ja inokuloitu alusta, jossa oli maksimi DMSO-pitoisuus (1 %).

4.4. Tulehdusta ehkäisevä toiminta

4.4.1. Soluviljely

Hiiren leukeeminen makrofagi RAW 264.7 -solulinja, joka kuului American Type Culture Collectioniin (ATCC TIB-71), viljeltiin ryhmämme aiemmin raportoimalla tavalla [92].

4.4.2. Typpioksidin tuotanto

NO-tuotanto arvioitiin arvioimalla nitraattikonsentraatio viljelmän supernatanteissa käyttäen Griess-reagenssia [93]. Soluja (0,6 × 106 solua/kuoppa) viljeltiin 48-kuoppaviljelylevyillä. Makrofagit stabiloitiin yön yli, sitten esikäsiteltiin 1 tunnin ajan EO:lla (0,08–1,25 µL/ml), joka oli laimennettu DMSO:lla ja aktivoitiin sen jälkeen 50 ng/ml LPS:llä 24 tunnin ajan. LPS-stimuloituja makrofageja ja käsittelemättömiä makrofageja käytettiin positiivisina ja negatiivisina kontrolleina, vastaavasti. Griessin reaktio suoritettiin aiemmin ryhmässämme kuvatulla tavalla [92]. Ryhmämme oli jo osoittanut, että DMSO:lla korkeimmalla käytetyllä pitoisuudella (0,4 prosenttia) ei ole anti-inflammatorista tai sytotoksisuutta (tietoja ei näytetä).

4.4.3. Tulehdusta edistävien proteiinien, iNOS:n ja COX:n ilmentyminen-2 

RAW 264.7 -soluja (1,2 × 106 solua/kuoppa) viljeltiin 6-kuoppalevyillä ja stabiloitiin yön yli. Sitten näitä soluja inkuboitiin 1 tunnin ajan EO:n kanssa pitoisuudella 1,25 ui/ml, mitä seurasi 24 tunnin LPS-aktivointi (50 ng/ml). Negatiivinen kontrolli koostui käsittelemättömistä soluista ja positiivinen kontrolli koostui vain LPS-käsitellyistä soluista. Solulysaattien valmistus seurasi Zuzarten et ai. aiemmin suorittamaa protokollaa. [92]

Indusoituvan typpioksidisyntaasin (iNOS) ja syklo-oksigenaasin {{0}} (COX-2) pitoisuus arvioitiin Western blot -analyysillä, kuten aiemmin on kuvattu [13]. Proteiinien erotusta varten suoritettiin elektroforeettinen ajo 10 % (v/v) SDS-polyakryyliamidigeeleillä 130 V jännitteellä 1,5 tunnin ajan. Proteiinilinjat blotattiin tämän jälkeen polyvinylideenifluoridikalvoille (aiemmin aktivoitu metanolilla) 400 mA:lla 3 tunnin ajan. Sitten kalvoja inkuboitiin 1 tunti huoneenlämpötilassa epäspesifisten IgG:iden kanssa, joissa oli 5 prosenttia (w/v) rasvatonta maitoa TBS-T:ssä. Niitä inkuboitiin edelleen yön yli 4 ◦C:ssa spesifisten anti-iNOS (1:500; R&D Systems) tai anti-COX-2 (1:5000; Abcam, Cambridge, UK) vasta-aineiden kanssa . Lopuksi niitä pestiin 30 minuuttia TBS-T:llä (10 min, 3 kertaa) ja inkuboitiin 1 tunti huoneenlämmössä sekundaaristen vasta-aineiden kanssa (1:40,000; Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX, USA ) konjugoituna piparjuuriperoksidaasin kanssa. Immunokompleksien havaitseminen suoritettiin kemiluminesenssiskannerilla (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, USA). Tubuliinin vastaisia ​​vasta-aineita (1:20 000; Sigma, St. Louis, MO, USA) käytettiin latauskontrollina. Proteiinin kvantifiointiin käytettiin ImageLab-ohjelmistoversiota 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, USA).

4.5. Solujen siirto

Hiiren alkion fibroblastisolulinjaa NIH 3T3 (ATCC CRL-1658) viljeltiin aiemmin kohdassa [6] kuvatulla tavalla.

4.5.2. Solujen migraatiomääritys

Solujen migraatio suoritettiin käyttämällä naarmuhaavamääritystä julkaisun Martinotti et ai. [94] pienin muutoksin, kuten aiemmin on raportoitu [13]. Lyhyesti sanottuna NIH 3T3 -fibroblastit ympättiin tiheydellä 2,5 × 105 solua/ml ja niiden annettiin saavuttaa konfluenssi. Myöhemmin haava tehtiin 200 ul:n pipetin kärjellä ja kiinnittymättömät solut poistettiin pesemällä PBS:llä pH 7,4. DMEM, jossa on 2 prosenttia FBS:ää EO:n (1,25 µl/ml) kanssa tai ilman sitä. Kuvat otettiin 0, 12 ja 18 tuntia naarmuuntumisen jälkeen vaihekontrastimikroskoopilla, ja haavan alue mitattiin ImageJ/Fiji-ohjelmistolla. Esitetyt tulokset saatiin käyttämällä seuraavaa yhtälöä:

4.6. Solujen elinkelpoisuus

Erilaisten EO:n pitoisuuksien vaikutus makrofagien ja fibroblastien elinkykyyn arvioitiin käyttämällä resatsuriinin pelkistysmääritystä, kuten aiemmin on raportoitu [6].

4.7. Etoposidin aiheuttama vanheneminen

Vanheneminen arvioitiin käyttämällä etoposidia vanhenemisen indusoijana, kuten muualla on raportoitu [95], joissain muokkauksissa. Lyhyesti sanottuna 24 tunnin etoposidin jälkeen soluja inkuboitiin edelleen 72 tuntia S. aurea EO:n läsnä ollessa tai poissa (CT). Beeta-galaktosidaasi arvioitiin käyttämällä kaupallisesti saatavaa pakkausta valmistajan protokollan mukaisesti (#9860, Cell Signaling Technology Inc., Danvers, MA, USA). Selkeä sininen värjäytyminen osoittaa beeta-galaktosidaasiaktiivisuutta. Värikehityksen jälkeen kuopat valokuvattiin myöhempää kuva-analyysiä varten. ImageJ-ohjelmistoa käytettiin kvantitatiiviseen analyysiin arvioimalla vanhenevien solujen prosenttiosuus.

4.8. Tilastollinen analyysi 

Kokeet suoritettiin vähintään kahtena rinnakkaisena kolmena riippumattomana kokeena. Keskiarvot ± SEM (keskiarvon standardivirhe) on esitetty tuloksissa. Tilastollinen merkitys anti-inflammatorisille, solujen elinkelpoisuus- ja vanhenemismäärityksille arvioitiin yksisuuntaisella varianssianalyysillä (ANOVA) ja Dunnettin post hoc -testillä käyttäen GraphPad Prism versiota 9.3.0 (GraphPad Software, San Diego, CA , USA). Vaikka tilastollinen merkitsevyys solujen migraatiomäärityksille arvioitiin käyttämällä kaksisuuntaista ANOVA:ta ja sen jälkeen Sydákin useita vertailutestejä, p-arvot < 0,05 hyväksyttiin tilastollisesti merkitseviksi.

5. Johtopäätökset

Tämä työ vahvistaa Salvia spp. validoimalla joitain S. aurean perinteisiä käyttötapoja. Lisäksi esitettiin yksittäinen kemiallinen koostumus, jossa pääyhdisteinä olivat 1,8-kineoli, -pineeni, cis-tujoni, kamferi, (E)-karyofyleeni, trans-tujoni, -pineeni, kamfeeni ja -humuleeni. Raportoimme tässä, että EO:lla on antifungaalisia, anti-inflammatorisia ja haavoja parantavia vaikutuksia, mikä vahvistaa tähän lajiin liittyvät perinteiset käyttötarkoitukset ihoinfektioiden, tulehdukseen liittyvien sairauksien ja haavojen hoitoon.

Lisäksi tämä tutkimus raportoi ensimmäistä kertaa, että tämä laji kykeni saamaan aikaan vanhenemista estäviä vaikutuksia, mikä lisäsi entisestään kiinnostusta tätä lajia kohtaan. Siksi nämä tulokset korostavat S. aurean roolia tulehduksen ja ihoon liittyvien infektioiden lievittämisessä, mikä vahvistaa kiinnostusta dermokosmetiikkaa kohtaan. Vaikka tämä tutkimus on osoittanut, että arvokkaiden aineenvaihduntatuotteiden tuotantoa, joilla on olennaista biologista aktiivisuutta, voidaan edistää viljelyn avulla, viljellyn kasvin tarkka kemiallinen analyysi on välttämätöntä, kun otetaan huomioon geneettisten ja ympäristötekijöiden aiheuttama kemiallisen profiilin äärimmäinen vaihtelu. (stressi, maaperän ominaisuudet, sadonkorjuukausi).

Tekijän panokset:LS ja AM; validointi, DM, EC, MJG, MTC ja SP; muodollinen analyysi, JMA-S., MJG ja AP; tutkimus, JMA-S., AM ja AP; resurssit, AM, MTC ja LS; tietojen kuratointi, AP; kirjoittaminen – alkuperäisen luonnoksen valmistelu, EC, DM, JMA-S., AP ja AM; kirjoittaminen – tarkastelu ja editointi, EC, DM, MTC, LS ja AM; visualisointi, JMA-S.; valvonta, LS ja AM; projektin hallinto, LS; rahoituksen hankinta, LS ja MTC Kaikki kirjoittajat ovat lukeneet käsikirjoituksen julkaistun version ja hyväksyneet sen.

Rahoitus: Tämä työ on rahoitettu kilpailukyvyn ja kansainvälistymisen toimintaohjelmasta COMPETE 2020 ja Portugalin kansallisista varoista FCT-Fundação para a Ciência ea Tecnologian kautta hankkeissa UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 ja LA8/P 2020.

Kiitokset: Kirjoittajat kiittävät Daniela Standenin, The International Study and Language Instituten (The University of Reading, Iso-Britannia, d.standen@reading.ac.uk) arvokkaasta panoksesta teknisestä tuesta.

Viitteet

1. Kaur, N.; Ahmed, T. Lääke- ja aromaattisten kasvien bioaktiiviset sekundaariset metaboliitit ja niiden tauteja torjuvat ominaisuudet. Lääke- ja aromaattiset kasvit; Springer Nature: Basingstoke, Iso-Britannia, 2021; s. 113–142. ISBN 978-3-030-58974-5.

2. Pinto, E.; Pina-Vaz, C.; Salgueiro, L.; Gonçalves, MJ; Costa-De-Oliveira, S.; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Rodrigues, A.; Martinez-De-Oliveira, J. Thymus pulegioidesin eteerisen öljyn antifungaalinen vaikutus Candida-, Aspergillus- ja dermatofyyttilajeihin. J. Med. Microbiol. 2006, 55, 1367–1373. [CrossRef]

3. Santos, EL; Freitas, PR; Araújo, ACJ; Almeida, RS; Tintino, SR; Paulo, CLR; Silva, ACA; Silva, LE; do Amaral, W.; Deschamps, C.; et ai. Aloysia gratissima (Gillies & Hook.) Tronc eteerinen öljy parantaa antibioottien antibakteerista vaikutusta. ja sen tärkein ainesosa beeta-karyofyleeni. Phytomedicine Plus 2021, 1, 100100. [CrossRef]

4. Edris, AE Eteeristen öljyjen ja niiden haihtuvien ainesosien farmaseuttiset ja terapeuttiset mahdollisuudet: Katsaus. Phytother. Res. 2007, 21, 308–323. [CrossRef]

5. Ghorbani, A.; Esmaeilizadeh, M. Salvia Officinalisin ja sen komponenttien farmakologiset ominaisuudet. J. Tradit. Täydentää. Med. 2017, 7, 433–440. [CrossRef]

6. Piras, A.; Maccioni, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Gonçalves, MJ; Alves-Silva, JM; Silva, A.; Cruz, MT; Salgueiro, L.; Maxia, A. Teucrium sodium L. subsp.:n eteerisen öljyn kemiallinen koostumus ja biologinen aktiivisuus. kardioidit (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) Sardinian saarelta (Italia). Nat. Tuot. Res. 2022, 36, 5828–5835. [CrossRef]

7. Maccioni, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Piras, A.; Gonçalves, MJ; Alves-Silva, JM; Salgueiro, L.; Maxia, A. Sardinian saarelta, Italiasta peräisin olevan kahden uuden Teucrium capitatum L. -kemotyypin ilmaosista peräisin olevan eteerisen öljyn sienivastainen aktiivisuus ja kemiallinen koostumus. Nat. Tuot. Res. 2020, 35, 6007–6013. [CrossRef]

8. Piras, A.; Porcedda, S.; Falconieri, D.; Maxia, A.; Gonçalves, M.; Cavaleiro, C.; Gonc¸alves, MJ; Salgueiro, L. Sardinian saarella (Italia) villinä kasvavien Mentha spicata L.:n ja Mentha pulegium L.:n eteeristen öljyjen antifungaalinen aktiivisuus. Nat. Tuot. Res. 2021, 35, 993–999. [CrossRef]

9. Walker, JB; Sytsma, KJ Kannen evoluutio Salvia-suvun (Lamiaceae) suvussa: Molekyylifylogeneettiset todisteet kantavivun useista alkuperästä. Ann. Bot. 2007, 100, 375–391. [CrossRef]

10. Waller, SB; Cleff, MB; Serra, EF; Silva, AL; dos Reis Gomes, A.; de Mello, JRB; de Faria, RO; Meireles, MCA Lamiaceae-suvun kasvit antifungaalisten molekyylien lähteenä humanisti- ja eläinlääketieteessä. Microb. Patog. 2017, 104, 232–237. [CrossRef]

11. Cocco, E.; Maccioni, D.; Sanjust, E.; Falconieri, D.; Farris, E.; Maxia, A. Ethnopharmacobotania ja Välimeren endeemisten kasvien monimuotoisuus Marmillan osa-alueella, Sardiniassa, Italiassa. Plants 2022, 11, 3165. [CrossRef]

12. Afonso, AF; Pereira, OR; Fernandes, Â.; Calhelha, RC; Silva, AMS; Ferreira, RCF; Cardoso, SM Salvia africana, Salvia Officinalis "Icterina" ja Salvia mexicana vesiuutteiden fytokemiallinen koostumus ja bioaktiiviset vaikutukset. Molecules 2019, 24, 4327. [CrossRef]

13. Alves-Silva, JM; Cocco, E.; Piras, A.; Gonçalves, MJ; Silva, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Cruz, MT; Maxia, A.; Salgueiro, L. Salvia cacaliifolia Benthin kemiallisen koostumuksen ja biologisten ominaisuuksien paljastaminen. eteerinen öljy. Plants 2023, 12, 359. [CrossRef]

14. Nkomo, MM; Katerere, DD; Vismer, HH; Cruz, TT; Balayssac, SS; Malet-Martino, MM; Makunga, NN Fusariumin esto Salvia africana-lutea L. -lääkekasvin luonnonvaraisten populaatioiden toimesta, mikä liittyy metabolomiseen profilointiin. BMC-täydennys. Altern. Med. 2014, 14, 99. [CrossRef]

15. Codd, LE Flora of Southern Africa: Part. 4 Lamiaceae; Kasvitieteellinen tutkimuslaitos: Pretoria, Etelä-Afrikka, 1985; Osa 28, ISBN 0621082686.

16. Makunga, NP; Van Staden, J. Tehokas järjestelmä lääketieteellisesti tärkeän aromaattisen kasvin klonaalisten kasvien tuottamiseksi: Salvia africana-lutea L. Plant Cell Tissue Organ Cult. 2007, 92, 63–72. [CrossRef]

17. Aston Philander, L. Western Cape Rasta pensaslääketieteen etnobotaniikka. J. Ethnopharmacol. 2011, 138, 578–594. [CrossRef]

18. Watt, JM; Breyer-Brandwijk, MG Etelä- ja Itä-Afrikan lääkekasvit ja myrkylliset kasvit: niiden lääketieteellisten ja muiden käyttötarkoitusten, kemiallisen koostumuksen, farmakologisten vaikutusten ja toksikologian selvitys ihmisissä ja eläimissä; E. & S. Livingstone: Edinburgh, Iso-Britannia, 1962.

19. Gupta, AK; Cooper, EA Päivitys dermatofytoosin sienilääkkeessä. Mycopathologia 2008, 166, 353–367. [CrossRef]

20. Matiz, C.; Friedlander, SF Ihonalaisten kudosten infektiot ja paiseet. Lasten tartuntatautien periaatteet ja käytännöt; Elsevier: Amsterdam, Alankomaat, 2012; s. 454–462.e2. [CrossRef]

21. De Oliveira, CB; Vasconcellos, C.; Sakai-Valente, NY; Sotto, MN; Luiz, FG; Belda Júnior, W.; Sousa, M. da GT de; Benard, G.; Criado, PR Toll-like reseptorit (TLR) 2 ja 4 keratinosyyttien ilmentymät potilailta, joilla on paikallinen ja levinnyt dermatofytoosi. Rev. Inst. Med. Trop. São Paulo 2015, 57, 57–61. [CrossRef]

22. Celestrino, GA; Reis, APC; Criado, PR; Benard, G.; Sousa, MGT Trichophyton rubrum saa aikaan fagosyyttisiä ja tulehdusta edistäviä vasteita ihmisen monosyyteissä Toll-Like Receptor 2:n kautta. Microbiol. 2019, 10, 2589. [CrossRef]

23. Sun, S.-C. Ei-kanoninen NF-B-reitti immuniteetissa ja tulehduksissa. Nat. Rev. Immunol. 2017, 17, 545–558. [CrossRef]

24. Rao, KMK Inos-ilmentymistä säätelevät molekyylimekanismit eri solutyypeissä. J. Toxicol. Ympäristö. Terveys B-osa 2000, 3, 27–58. [CrossRef]

25. Minghetti, L. Syklo-oksigenaasi-2 (COX-2) tulehduksellisissa ja rappeuttavissa aivosairauksissa. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 2004, 63, 901–910. [CrossRef]

26. Sharma, A.; Gupta, S. Herbonanoceuticals suojaava ilmentymä antifungaaleina: mahdollinen lääkekandidaatti dermatofyyttiseen infektioon. Health Sci. Tasavalta 2022, 5, e775. [CrossRef]

27. Guo, S.; DiPietro, LA Haavan paranemiseen vaikuttavat tekijät. J. Dent. Res. 2010, 89, 219–229. [CrossRef]

28. Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Canhoto, J.; Vale-Silva, L.; Silva, MJ; Pinto, E.; Salgueiro, L. Lavandula viridis LHérin eteeristen öljyjen kemiallinen koostumus ja antifungaalinen vaikutus. J. Med. Microbiol. 2011, 60, 612–618. [CrossRef]

29. Martinez-Rossi, NM; Bitencourt, TA; Peres, NTA; Lang, EAS; Gomes, EV; Quaresemin, NR; Martins, kansanedustaja; Lopes, L.; Rossi, A. Dermatofyyttien vastustuskyky antifungaalisille lääkkeille: Mekanismit ja esite. Edessä. Microbiol. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

30. Mourad, A.; Perfect, JR. Sota kryptokokkoosia vastaan: Katsaus sienilääkkeiden arsenaaliin. Mem. Inst. Oswaldo Cruz 2018, 113, 7. [CrossRef]

31. Vonkeman, HE; van de Laar, MAFJ Ei-steroidiset tulehduskipulääkkeet: Haittavaikutukset ja niiden ehkäisy. Semin. Rheum-niveltulehdus. 2010, 39, 294–312. [CrossRef]

32. Kamatou, GPP; van Zyl, RL; van Vuuren, SF; Figueiredo, AC; Barroso, JG; Pedro, LG; Viljoen, AM Kolmen eteläafrikkalaisen Salvia-lajin eteeristen öljyjen koostumuksen, öljymyrkyllisyyden ja liuotinuutteiden biologisen aktiivisuuden kausivaihtelut. S. Afr. J. Bot. 2008, 74, 230–237. [CrossRef]

33. Kamatou, GPP; van Zyl, RL; van Vuuren, SF; Viljoen, AM; Figueiredo, AC; Barroso, JG; Pedro, LG; Tilney, pääministeri; Barroso, JG Neljän Etelä-Afrikasta kotoisin olevan Salvia-lajin eteeristen öljyjen kemiallinen koostumus, lehtitrichomityypit ja biologiset vaikutukset. J. Essent. Oil Res. 2006, 18, 72–79. [CrossRef]

34. Najar, B.; Mecacci, G.; Nardi, V.; Cervelli, C.; Nardoni, S.; Mancini, F.; Ebani, VV; Giannecchini, S.; Pistelli, L. Etelä-Afrikan Salvia spp. yhtenäisissä olosuhteissa viljellyt eteeriset öljyt. Molecules 2021, 26, 2826. [CrossRef]

35. Cowling, RM; Rundel, PW; Lamont, BB; Arroyo, MK; Arianoutsou, M. Kasvien monimuotoisuus Välimeren ilmasto-alueilla. Trends Ecol. Evol. 1996, 11, 362-366. [CrossRef]

36. Médail, F. Ekosysteemit: Välimeri. julkaisussa Encyclopedia of Ecology, osa 3; Elservier Inc.: Oxford, Iso-Britannia, 2008; 5. osa, s. 2296–2308.

37. Adams, RP Identification of Essential Oil Components by Gas Chromatography/Quadrupole Mass Spectrometry, 4. painos; Allured Publishing Corporation: Carol Stream, IL, USA, 2007.

38. National Institute of Standards and Technology Mass Spectral Library (NIST/EPA/NIH).

39. Guijarro-Muñoz, I.; Compte, M.; Álvarez-Cienfuegos, A.; Álvarez-Vallina, L.; Sanz, L. Lipopolysaccharide aktivoi Toll-like Receptor 4 (TLR4) -välitteisen NF-KB-signalointireitin ja proinflammatorisen vasteen ihmisen perisyyteissä. J. Biol. Chem. 2014, 289, 2457–2468. [CrossRef]

40. Manning, J.; Goldblatt, P. Plants of the Greater Cape Floristic Region. 1: Core Cape Flora; Etelä-Afrikan kansallinen biologisen monimuotoisuuden instituutti: Pretoria, Etelä-Afrikka, 2012; ISBN 1919976744.

41. Lim Ah Tock, MJ; Kamatou, GPP; Combrinck, S.; Sandasi, M.; Viljoen, AM Kemometrinen arvio kolmen Etelä-Afrikasta kotoisin olevan Salvia-lajin eteeristen öljyjen vaihtelusta. Phytochemistry 2020, 172, 112249. [CrossRef]

42. Fokou, JBH; Dongmo, PMJ; Boyom, FF; Fokou, JBH; Dongmo, PMJ; Boyom, FF Eteerisen öljyn kemiallinen koostumus ja farmakologiset ominaisuudet. In Eteeriset öljyt – Oils of Nature; El-Shemy, H., toim.; IntechOpen: Lontoo, Iso-Britannia, 2020; s. 13–36. ISBN 978-1-78984-641-6.

43. Figueiredo, AC; Barroso, JG; Pedro, LG; Scheffer, JJC Sekundaarisen metaboliittien tuotantoon vaikuttavat tekijät kasveissa: Haihtuvat komponentit ja eteeriset öljyt. Maku. Fragr. J. 2008, 23, 213–226. [CrossRef]

44. van Vuuren, S.; Ramburrun, S.; Kamatou, G.; Viljoen, A. Etelä-Afrikan alkuperäiskansojen eteeriset öljyt mahdollisina mikrobilääkkeinä jalkojen hajun (bromodoosi) hoitoon. S. Afr. J. Bot. 2019, 126, 354–361. [CrossRef]

45. Scott, G.; Springfield, EP; Coldrey, N. Farmakognostinen tutkimus 26 eteläafrikkalaisesta kasvilajista, joita käytetään perinteisinä lääkkeinä. Pharm Biol. 2004, 42, 186–213. [CrossRef]

46. ​​Oosthuizen, CB; Gasa, N.; Hamilton, CJ; Lall, N. Mykotiolidisulfidireduktaasin ja mykobakteeribiofilmin estäminen valituilla Etelä-Afrikan kasveilla. S. Afr. J. Bot. 2019, 120, 291–297. [CrossRef]

47. Alves, M.; Gonçalves, MJ; Zuzarte, M.; Alves-Silva, JM; Cavaleiro, C.; Cruz, MT; Salgueiro, L. Kahden Iberian timjamin eteerisen öljyn antifungaalisen potentiaalin paljastaminen: vaikutus C. albicansin alkioputkeen ja suoritettuihin biofilmeihin. Edessä. Pharmacol. 2019, 10, 446. [CrossRef]

48. Shukla, R.; Singh, P.; Prakash, B.; Dubey, NK Callistemon lanceolatus (Sm.) Makean eteerisen öljyn ja sen pääkomponentin 1,8-cineoli sieni-, aflatoksiinin esto- ja antioksidanttivaikutus kikherneen siemenistä peräisin olevia sieni-isolaatteja vastaan. Food Control 2012, 25, 27–33. [CrossRef]

49. Yu, D.; Wang, J.; Shao, X.; Xu, F.; Wang, H. Teepuuöljyn ja sen kahden ominaiskomponentin antifungaaliset vaikutustavat Botrytis cinereaa vastaan. J. Appl. Microbiol. 2015, 119, 1253–1262. [CrossRef]

50. Morcia, C.; Malnati, M.; Terzi, V. Terpineeni-4-olin, eugenolin, karvonin, 1,8-cineolin (eukalyptolin) ja tymolin in vitro antifungaalinen aktiivisuus mykotoksigeenisiä kasvipatogeenejä vastaan. Ruokalisä. Contam. Osa A 2011, 29, 415–422. [CrossRef]

51. Kim, H.-M.; Kwon, H.; Kim, K.; Lee, S.-E. 1,8-cineolin ja t-kanelimaldehydin antifungaalinen ja aflatoksigeeninen vaikutus Aspergillus afflatukseen. Appl. Sci. 2018, 8, 1655. [CrossRef]

52. da Silva, ACR; Lopes, PM; de Azevedo, MMB; Costa, DCM; Alviano, CS; Alviano, DS a-pineenin ja -pineenienantiomeerien biologiset aktiivisuudet. Molecules 2012, 17, 6305–6316. [CrossRef]

53. Jang, S.-K.; Lee, S.-Y.; Kim, S.-H.; Hong, C.-Y.; Park, M.-J.; Choi, I.-G. Kuuden havupuun eteeristen öljyjen antifungaalinen vaikutus Aspergillus fumigatusta vastaan. J. Korean Wood Sci. Technol. 2012, 40, 133–140. [CrossRef]

54. de Macêdo Andrade, AC; Rosalen, PL; Freires, IA; Scotti, L.; Scotti, MT; Aquino, SG; de Castro, RD Antifungaalinen aktiivisuus, vaikutustapa, telakointiennuste ja (plus )- -pineenienantiomeerien antibiofilmivaikutukset Candida spp. Curr. Yläosa. Med. Chem. 2018, 18, 2481–2490. [CrossRef]

55. Shin, S. Glehnia littoralis -lajin eteeristen öljyjen antifungaaliset vaikutukset yksinään ja yhdessä ketokonatsolin kanssa. Nat. Tuot. Sci. 2005, 11, 92–96.

56. Iraji, A.; Yazdanpanah, S.; Alizadeh, F.; Mirzamohammadi, S.; Ghasemi, Y.; Pakshir, K.; Yang, Y.; Zomorodian, K. Monoterpeenien ja niiden isomeerien antifungaalisen toiminnan seulonta Candida-lajeja vastaan. J. Appl. Microbiol. 2020, 129, 1541–1551. [CrossRef]

57. Jaafar, M.; Mitri, S.; Na'was, T. Gram-negatiivisten bakteerien kasvun ja biofilmin muodostumisen estäminen alfa-tujonilla. IOSR J. Pharm. Biol. Sci. 2018, 13, 2. [CrossRef]

58. Teker, T.; Sefer, Ö.; Gazda ˘glı, A.; Yörük, E.; Varol, G. ˙I.; Albayrak, G. -thujone osoittaa antifungaalista aktiivisuutta F. graminearum -bakteeria vastaan ​​indusoimalla oksidatiivista stressiä, apoptoosia, epigenetiikan muutoksia ja vähentynyttä toksiinisynteesiä. euroa J. Plant Pathol. 2021, 160, 611–622. [CrossRef]

59. Huo, H.; Gu, Y.; Cao, Y.; Liu, N.; Jia, P.; Kong, W. Kamferin antifungaalinen aktiivisuus Fusariumin neljää fytopatogeeniä vastaan. S. Afr. J. Bot. 2022, 148, 437–445. [CrossRef]

60. Wu, K.; Lin, Y.; Chai, X.; Duan, X.; Zhao, X.; Chun, C. Cinnamomum camphora var. eteerisen öljyn höyryfaasin antibakteerisen vaikutuksen mekanismit. linaloofera Fujita Escherichia colia vastaan. Food Sci. Nutr. 2019, 7, 2546–2555. [CrossRef]

61. Magiatis, P.; Skaltsounis, A.-L.; Chinou, I.; Haroutounian, SA Kolmen kreikkalaisen akillealajin eteeristen öljyjen kemiallinen koostumus ja in vitro antimikrobinen aktiivisuus. Z. Für Nat. C 2002, 57, 287–290. [CrossRef] [PubMed]

62. Dahham, S.; Tabana, Y.; Iqbal, M.; Ahamed, M.; Ezzat, M.; Majid, A.; Majid, A. Aquilaria crassnan eteerisestä öljystä peräisin olevan seskviterpeeni-kariofyleenin syövänvastaiset, antioksidanttiset ja antimikrobiset ominaisuudet. Molecules 2015, 20, 11808–11829. [CrossRef]

63. Pieri, FA; de Castro Souza, MC; Vermelho, LLR; Vermelho, MLR; Perciano, PG; Vargas, FS; Borges, APB; da Veiga-Junior, VF; Moreira, MAS -karyofyleenin käyttö bakteerien aiheuttamaa hammasplakin muodostumista vastaan ​​koirilla. BMC Vet. Res. 2016, 12, 216. [CrossRef]

64. Goren, AC; Piozzi, F.; Akcicek, E.; Kılıç, T.; Çarıkçı, S.; Mozio ˘glu, E.; Setzer, WN 22 Stachys-lajin (vuoristotee) eteeristen öljyjen koostumus ja niiden biologinen aktiivisuus. Phytochem. Lett. 2011, 4, 448–453. [CrossRef]

65. Yadav, N.; Chandra, H. Eukalyptusöljyn ja sen ainesosan 1,8-kineolin, tulehdus- ja infektiovasteiden tukahduttaminen keuhkojen makrofageissa: Kuviontunnistusreseptorien TREM-1 ja NLRP3, MKP-kinaasin säätelijä MKP{{5} rooli }} ja NFkB. PLoS ONE 2017, 12, e0188232. [CrossRef]

66. Olut, AM; Zagorchev, P.; Filipova, DM; Lukanov, J. 1,8-cineolin vaikutukset syklo-oksigenaasin ja syklo-oksigenaasi 1:n ja syklo-oksigenaasi 2:n isoformien aktiivisuuteen. Nat. Tuot. Chem. Res. 2017, 5, 1000253. [CrossRef]

67. Bastos, VPD; Gomes, AS; Lima, FJB; Brito, TS; Soares, PMG; Pinho, JPM; Silva, CS; Santos, AA; Souza, MHLP; Magalhães, PJC inhaloitu 1,8-cineoli vähentää tulehdusparametreja ovalbumiinilla altistuneiden marsujen hengitysteissä. Perus. Clin. Pharmacol. Toxicol. 2011, 108, 34–39. [CrossRef]

68. Juergens, LJ; Racké, K.; Tuleta, I.; Stoeber, M.; Juergens, UR 1,8-cineolin (eukalyptolin) tulehdusta estävät vaikutukset parantavat glukokortikoidivaikutuksia in vitro: Uusi lähestymistapa steroideja säästävään lisähoitoon keuhkoahtaumatautiin ja astmaan? Synergia 2017, 5, 1–8. [CrossRef]

69. Santos, FA; Rao, VSN Monissa kasvien eteerisissä öljyissä olevan terpenoidioksidin, 1,8-cineolin tulehdusta ja antinosiseptiiviset vaikutukset. Phytother. Res. 2000, 14, 240–244. [CrossRef]

70. Mohammed, HA; Mohammed, SAA; Khan, O.; Ali, HM Paikallinen eukalyptolivoide nopeuttaa haavan paranemista ja antaa antioksidanttisia ja anti-inflammatorisia vaikutuksia rottien ihon palovammamallissa. J. Oleo Sei. 2022, 71, ess22214. [CrossRef]

71. Juergens, UR; Dethlefsen, U.; Steinkamp, ​​G.; Gillissen, A.; Repges, R.; Vetter, H. 1.8-cineolin (eukalyptolin) tulehdusta estävä vaikutus keuhkoastmassa: kaksoissokkoutettu lumekontrolloitu tutkimus. Hengitä. Med. 2003, 97, 250–256. [CrossRef]

72. Lima, PR; de Melo, TS; Carvalho, KMMB; de Oliveira, Í.B.; Arruda, BR; de Castro Brito, GA; Rao, VS; Santos, FA 1,8-cineoli (eukalyptoli) parantaa seruleiinin aiheuttamaa akuuttia haimatulehdusta moduloimalla sytokiinejä, oksidatiivista stressiä ja NF-KB-aktiivisuutta hiirissä. Life Sci. 2013, 92, 1195–1201. [CrossRef]

73. Coté, H.; Boucher, M.-A.; Pichette, A.; Legault, J. Tanacetum vulgare l.:n tulehduksia estävät, antioksidanttiset, antibioottiset ja sytotoksiset vaikutukset. eteerinen öljy ja sen ainesosat. Medicines 2017, 4, 34. [CrossRef]

74. Rufino, AT; Ribeiro, M.; Juudas, F.; Salgueiro, L.; Lopes, MC; Cavaleiro, C.; Mendes, AF ( plus )- -pineenin anti-inflammatorinen ja kondroprotektiivinen aktiivisuus: Rakenteellinen ja enantiomeerinen selektiivisyys. J. Nat. Tuot. 2014, 77, 264–269. [CrossRef]

75. Schepetkin, IA; Kushnarenko, SV; Özek, G.; Kirpotina, LN; Utegenova, GA; Kotukhov, YA; Danilova, AN; Özek, T.; Baser, KHC; Quinn, MT Ihmisen neutrofiilivasteiden estäminen Artemisia kotuchovii -lajin eteerisellä öljyllä ja sen ainesosilla. J. Agric. Food Chem. 2015, 63, 4999–5007. [CrossRef]

76. dos Santos, E.; Leitão, MM; Aguero Ito, CN; Silva-Filho, SE; Arena, AC; de Souza Silva-Comar, FM; Nakamura Cuman, RK; Oliveira, RJ; Nazari Formagio, AS; Leite Kassuya, CA Ocimum kilimandscharicum Gürke -lehdistä eristettyjen eteeristen öljyjen ja kamferin kipua ja tulehdusta ehkäisevät vaikutukset. J. Ethnopharmacol. 2021, 269, 113697. [CrossRef]

77. Adhikari, A.; Bhandari, S.; Pandey, DP Anti-inflammatoriset yhdisteet kamferi ja metyylisalisylaatti perinteisesti käytetystä kipua parantavasta kasvista Equisetum arvense LJ Nepal Chem. Soc. 2019, 40, 1–4. [CrossRef]

78. Silva-Filho, S.; de Souza Silva-Comar, F.; Wiirzler, L.; do Pinho, R.; Greenspan, R.; Bersani-Amado, C.; Cuman, R. Kamferin vaikutus leukosyyttien käyttäytymiseen in vitro ja in vivo akuutissa tulehdusvasteessa. Trop. J. Pharm. Res. 2015, 13, 2031. [CrossRef]

79. Cho, JY; Chang, H.-J.; Lee, S.-K.; Kim, H.-J.; Hwang, J.-K.; Chun, HS Dekstraanisulfaatin natriumin aiheuttaman paksusuolitulehduksen parantaminen hiirillä antamalla suun kautta -karyofyleeniä, seskviterpeeniä. Life Sci. 2007, 80, 932–939. [CrossRef]

80. Gushiken, LFS; Beserra, FP; Hussni, MF; Gonzaga, MT; Ribeiro, varatoimitusjohtaja; de Souza, PF; Campos, JCL; Massaro, TNC; Hussni, CA; Takahira, RK; et ai. Beeta-karyofyleeni antioksidanttina, anti-inflammatorisena ja uudelleen epitelisoivana aktiivisuutena rotan ihohaavan leikkausmallissa. Oksid. Med. Solu Longev. 2022, 2022, 1.–21. [CrossRef]

81. Brito, LF; Oliveira, HBM; Neves Selis, N.; Souza, CLS; Junior, MNS; Souza, EP; da Silva, LSC; Souza Nascimento, F.; Amorim, AT; Campos, GB; et ai. Karyofyleenin anti-inflammatorinen vaikutus yhdessä dokosaheksaeenihapon kanssa Staphylococcus aureuksen aiheuttaman sepsiksen mallissa hiirillä. J. Sei. Food Agric. 2019, 99, 5870–5880. [CrossRef]

82. Sousa, LFB; Oliveira, HBM; das Neves Selis, N.; Morbeck, LLB; Santos, TC; da Silva, LSC; Viana, JCS; Reis, MM; Sam patio, BA; Campos, GB; et ai. -karyofyleeni ja dokosaheksaeenihappo, eristetyt tai liittyvät, voivat olla antinosiseptiivisiä ja anti-inflammatorisia vaikutuksia in vitro ja in vivo. Sci. Rep. 2022, 12, 19199. [CrossRef]

83. Scandiffio, R.; Geddo, F.; Cottone, E.; Querio, G.; Antoniotti, S.; Gallo, kansanedustaja; Maffei, ME; Bovolin, P. (e)- -kariofyleenin (bcp) suojaavat vaikutukset kroonisessa tulehduksessa. Nutrients 2020, 12, 3273. [CrossRef]

84. Salas-Oropeza, J.; Jimenez-Estrada, M.; Perez-Torres, A.; Castell-Rodriguez, AE; Becerril-Millan, R.; Rodriguez-Monroy, MA; Jarquin-Yañez, K.; Canales-Martinez, MM -pineenin ja -fellandreenin haavoja parantava vaikutus. Molecules 2021, 26, 2488. [CrossRef]

85. Rocha Caldas, GF; da Silva Oliveira, AR; Araújo, AV; Lafayette, SSL; Albuquerque, GS; da Costa Silva-Neto, J.; Costa-Silva, JH; Ferreira, F.; da Costa, JGM; Wanderley, AG Monoterpeeni 1,8-kineolin (eukalyptolin) mahalaukkua suojaavat mekanismit. PLoS ONE 2015, 10, e0134558. [CrossRef]

86. Chabane, S.; Boudjelal, A.; Napoli, E.; Benkhaled, A.; Ruberto, G. Teucrium polium subsp. capitatum (L.) Briq. eteerinen öljy. J. Essent. Oil Res. 2021, 33, 143–151. [CrossRef]

87. Tran, TA; Ho, MT; Song, YW; Cho, M.; Cho, SK Kamferi indusoi proliferatiivisia ja vanhenemista estäviä aktiivisuuksia ihmisen primaarisissa ihon fibroblasteissa ja estää UV-indusoitujen ryppyjen muodostumista hiiren ihossa. Phytother. Res. 2015, 29, 1917–1925. [CrossRef]

88. Rodenak-Kladniew, B.; Castro, A.; Stärkel, P.; Galle, M.; Crespo, R. 1, 8-Cineole edistää G0/G1-solusyklin pysähtymistä ja oksidatiivisen stressin aiheuttamaa vanhenemista HepG2-soluissa ja herkistää solut vanhenemisen estolääkkeille. Life Sci. 2020, 243, 117271. [CrossRef]

89. Euroopan neuvoston lääkkeiden ja terveydenhuollon laadun osasto. Euroopan farmakopea; EDQM: Strasbourg, Ranska, 2010; ISBN 978-92-871-6700-2.

90. Van den Dool, H.; Kratz, PD Retentioindeksijärjestelmän yleistys, joka sisältää lineaarisen lämpötilan ohjelmoidun kaasu-neste-osituskromatografian. J. Chromatogr. 1963, 11, 463–471. [CrossRef]

91. CLSI Clinical and Laboratory Standards Institute. Vertailumenetelmä liemen laimennusta varten rihmasienten antifungaalisen herkkyyden testaamiseksi. CLSI-asiakirja M38-A2, hyväksytty standardi, 2. painos; Clinical and Laboratory Standards Institute: Wayne, PA, USA, 2008; Osa 28, ISBN 1-56238-668-9.

92. Zuzarte, M.; Alves-Silva, JM; Alves, M.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Uusia oivalluksia Thymus carnosus- ja Thymus camphoratus -eteeristen öljyjen ja niiden pääyhdisteiden anti-inflammatorisesta potentiaalista ja turvallisuusprofiilista. J. Ethnopharmacol. 2018, 225, 10–17. [CrossRef]

93. Green, LC; Wagner, DA; Glogowski, J.; Kippari, PL; Wishnok, JS; Tannenbaum, SR Nitraatin, nitriitin ja [15N]-nitraatin analyysi biologisissa nesteissä. Anaali. Biochem. 1982, 126, 131-138. [CrossRef]

94. Martinotti, S.; Ranzato, E. Scratch haavan paranemismääritys. In Epidermal Cells: Methods in Molecular Biology; Turksen, K., toim.; Humana: New York, NY, USA, 2019; Osa 2109, s. 225–229. [CrossRef]

95. Moreira, P.; Sousa, FJ; Matos, P.; britit, GS; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Figueirinha, A.; Salgueiro, L.; Batista, MT; Branco, PC; et ai. Eucalyptus globulus -lehtien hydrotislauksella saatujen bioaktiivisten uutteiden kemiallinen koostumus ja vaikutus ihomuutoksia vastaan. Pharmaceutics 2022, 14, 561. [CrossRef]

【Lisätietoja: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】